| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-38页 |
| ·长江流域及其近海贝类资源概述 | 第17-20页 |
| ·长江中下游河域贝类分布及种类 | 第17-19页 |
| ·长江中下游河域贝类的开发利用及经济价值 | 第19-20页 |
| ·长江中下游河域贝类资源的保护 | 第20页 |
| ·贝类多糖研究进展 | 第20-26页 |
| ·贝类多糖的制备技术 | 第21-22页 |
| ·贝类多糖的生物学活性 | 第22-24页 |
| ·贝类多糖的构效关系 | 第24-26页 |
| ·贝类多糖的结构解析 | 第26-30页 |
| ·化学方法分析多糖结构 | 第27-28页 |
| ·仪器分析法分析多糖结构 | 第28-30页 |
| ·多糖与肠道菌群代谢关系研究进展 | 第30-34页 |
| ·肠道菌群的重要性 | 第30页 |
| ·肠道菌群在参与多糖代谢中所起的作用 | 第30-32页 |
| ·多糖对肠道菌群的影响 | 第32-33页 |
| ·肠道菌群代谢研究与疾病的预防、治疗 | 第33-34页 |
| ·本研究的意义及主要内容 | 第34-38页 |
| ·本研究的意义 | 第34-36页 |
| ·本论文研究的主要内容 | 第36-38页 |
| 第二章 河蚬多糖超声辅助酶法提取的优化 | 第38-52页 |
| ·材料与仪器 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40-43页 |
| ·酶解法(EAE)提取河蚬糖胺聚糖 | 第40-41页 |
| ·超声波辅助酶解法(UAEE)提取河蚬糖胺聚糖 | 第41页 |
| ·超声波辅助酶解法(UAEE)单因素实验设计 | 第41页 |
| ·超声波辅助酶解法(UAEE)响应曲面实验设计 | 第41-43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-50页 |
| ·不同酶浓度对河蚬多糖得率的影响 | 第43-44页 |
| ·超声波辅助酶解法(UAEE)单因素实验 | 第44-47页 |
| ·超声波辅助酶解法(UAEE)响应曲面分析 | 第47-50页 |
| ·本章小结 | 第50-52页 |
| 第三章 河蚬多糖的分离纯化及其理化性质分析 | 第52-67页 |
| ·材料与仪器 | 第53-54页 |
| ·实验材料 | 第53页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54-58页 |
| ·河蚬多糖的分离及纯化 | 第54-55页 |
| ·河蚬多糖组份的化学检测 | 第55-56页 |
| ·河蚬多糖组份的仪器检测 | 第56-58页 |
| ·实验结果与讨论 | 第58-65页 |
| ·河蚬多糖的分离及纯化 | 第58-60页 |
| ·河蚬多糖及其纯化产物组份的化学检测 | 第60-61页 |
| ·河蚬多糖及其纯化产物组份的仪器检测 | 第61-65页 |
| ·本章小结 | 第65-67页 |
| 第四章 河蚬多糖结构解析 | 第67-83页 |
| ·材料与仪器 | 第68页 |
| ·实验材料 | 第68页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68-70页 |
| ·原子力显微镜(AFM)制样及观测 | 第68-69页 |
| ·甲基化反应及GC/MS分析 | 第69-70页 |
| ·核磁共振样品制备与NMR实验数据采集 | 第70页 |
| ·实验结果与讨论 | 第70-82页 |
| ·原子力显微镜(AFM)下的形态分析 | 第70-71页 |
| ·甲基化反应及GC/MS分析 | 第71-73页 |
| ·河蚬多糖及其纯化产品的核磁共振波谱(NMR)分析 | 第73-82页 |
| ·本章小结 | 第82-83页 |
| 第五章 河蚬多糖体外抗氧化及抗肿瘤活性的研究 | 第83-114页 |
| ·材料与仪器 | 第84-86页 |
| ·实验材料 | 第84页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第84-85页 |
| ·试剂配制 | 第85-86页 |
| ·实验方法 | 第86-94页 |
| ·河蚬多糖体外抗氧化活性的研究 | 第86-88页 |
| ·河蚬多糖体外抗肿瘤活性的筛选 | 第88-90页 |
| ·河蚬多糖体外抗肿瘤活性相关机理的研究 | 第90-94页 |
| ·结果与讨论 | 第94-113页 |
| ·河蚬多糖体外抗氧化活性 | 第94-99页 |
| ·河蚬多糖体外抗肿瘤活性的筛选 | 第99-105页 |
| ·CFPS-1对人乳腺癌细胞(MDA-MB-231)生长抑制机理的研究 | 第105-113页 |
| ·本章小结 | 第113-114页 |
| 第六章 河蚬多糖对人体肠道菌群的影响 | 第114-141页 |
| ·材料与方法 | 第115-117页 |
| ·材料 | 第115页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第115-117页 |
| ·实验方法 | 第117-127页 |
| ·河蚬多糖体外消化实验 | 第117页 |
| ·肠道微生物对多糖样品的体外降解 | 第117-119页 |
| ·菌群结构的检测 | 第119-124页 |
| ·代谢产物的检测 | 第124-125页 |
| ·可降解河蚬多糖的菌体筛选 | 第125-127页 |
| ·结果与讨论 | 第127-140页 |
| ·河蚬多糖的体外消化实验 | 第127页 |
| ·肠道菌群对河蚬多糖代谢产物的影响 | 第127-133页 |
| ·河蚬多糖对人肠道菌群生长的影响 | 第133-138页 |
| ·可降解河蚬多糖相关肠道细菌的筛选 | 第138-140页 |
| ·本章小结 | 第140-141页 |
| 第七章 研究结果与展望 | 第141-148页 |
| ·研究结果 | 第141-146页 |
| ·河蚬多糖超声辅助酶法提取条件的优化 | 第141-142页 |
| ·河蚬多糖分离纯化及理化性质的研究 | 第142-143页 |
| ·河蚬多糖的结果解析 | 第143-144页 |
| ·河蚬多糖抗氧化、抗肿瘤活性的研究 | 第144-145页 |
| ·河蚬多糖对人体肠道菌群微生态影响的研究 | 第145-146页 |
| ·主要创新点 | 第146-147页 |
| ·研究展望 | 第147-148页 |
| 参考文献 | 第148-165页 |
| 附录 | 第165-173页 |
| 作者简历及攻读博士期间发表的论文 | 第173-175页 |