摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-24页 |
1.1 海参简介 | 第11页 |
1.2 刺参自溶及其研究进展 | 第11-12页 |
1.3 海参体腔细胞的研究进展 | 第12-15页 |
1.3.1 体腔细胞形态学的研究进展 | 第12-14页 |
1.3.2 体腔细胞的功能 | 第14-15页 |
1.4 Ca~(2+)信号与细胞凋亡 | 第15-18页 |
1.4.1 Ca~(2+)的调控作用 | 第15页 |
1.4.2 细胞凋亡 | 第15-16页 |
1.4.3 Ca~(2+)信号与细胞凋亡 | 第16页 |
1.4.4 Ca~(2+)-ATP酶 | 第16-17页 |
1.4.5 钙调神经磷酸酶 | 第17页 |
1.4.6 钙调蛋白分解酶 | 第17-18页 |
1.5 内质网应激与细胞凋亡 | 第18-21页 |
1.5.1 钙网蛋白 | 第18-19页 |
1.5.2 内质网应激 | 第19页 |
1.5.3 内质网应激介导的细胞保护作用机制 | 第19-20页 |
1.5.4 内质网应激介导的细胞凋亡作用机制 | 第20-21页 |
1.6 流式细胞术 | 第21-22页 |
1.7 激光共聚焦技术 | 第22页 |
1.8 本课题主要研究内容及意义 | 第22-24页 |
第二章 材料与方法 | 第24-39页 |
2.1 实验材料 | 第24-28页 |
2.1.1 实验原料 | 第24页 |
2.1.2 实验仪器 | 第24-25页 |
2.1.3 实验试剂 | 第25-27页 |
2.1.4 试剂配制 | 第27-28页 |
2.2 实验方法 | 第28-39页 |
2.2.1 体腔细胞的制备 | 第28页 |
2.2.2 UVA诱导刺参自溶过程中Ca~(2+)参与调控体腔细胞凋亡实验条件的建立 | 第28-29页 |
2.2.3 细胞毒理学实验-MTT法 | 第29页 |
2.2.4 体腔细胞内Ca~(2+)浓度的测定 | 第29-30页 |
2.2.5 体腔细胞中全蛋白的提取 | 第30页 |
2.2.6 考马斯亮蓝法测定体腔细胞中蛋白含量 | 第30-31页 |
2.2.7 体腔细胞Ca~(2+)-ATP酶活力的测定 | 第31-32页 |
2.2.8 体腔细胞钙调神经磷酸酶活力的测定 | 第32-33页 |
2.2.9 体腔细胞钙调蛋白分解酶活力的测定 | 第33页 |
2.2.10 体腔细胞凋亡率的测定 | 第33页 |
2.2.11 内质网应激介导细胞凋亡相关因子的测定 | 第33-38页 |
2.2.12 数据统计 | 第38-39页 |
第三章 结果与讨论 | 第39-63页 |
3.1 UVA诱导刺参自溶过程中Ca~(2+)参与调控体腔细胞凋亡的实验条件 | 第39-40页 |
3.2 BAPTA-Na对刺参体腔细胞毒性实验 | 第40-41页 |
3.3 UVA对刺参体壁组织的影响 | 第41-42页 |
3.4 UVA诱导刺参自溶过程中对体腔细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第42-45页 |
3.4.1 LSCM检测刺参体腔细胞内Ca~(2+)浓度的变化情况 | 第42-44页 |
3.4.2 FCM检测刺参体腔细胞内Ca~(2+)浓度的变化情况 | 第44-45页 |
3.5 UVA诱导刺参自溶过程中对Ca~(2+)信号相关酶活力的影响 | 第45-48页 |
3.5.1 刺参体腔细胞Ca~(2+)-ATP酶活力的变化情况 | 第45-47页 |
3.5.2 刺参体腔细胞钙调神经磷酸酶和钙调蛋白分解酶活力的变化情况 | 第47-48页 |
3.6 UVA诱导刺参自溶过程中对体腔细胞凋亡率的影响 | 第48-50页 |
3.7 Ca~(2+)信号与内质网应激 | 第50-51页 |
3.8 内质网应激介导刺参体腔细胞凋亡的研究 | 第51-63页 |
3.8.1 钙网蛋白(CRT)表达的变化情况 | 第51-55页 |
3.8.2 Caspase-12、Caspase-9和Caspase-3表达的变化情况 | 第55-59页 |
3.8.3 CHOP和Bcl-2表达的变化情况 | 第59-63页 |
第四章 结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
附录 | 第75页 |