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刺参自溶过程中内质网应激介导体腔细胞凋亡的研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 绪论第11-24页
    1.1 海参简介第11页
    1.2 刺参自溶及其研究进展第11-12页
    1.3 海参体腔细胞的研究进展第12-15页
        1.3.1 体腔细胞形态学的研究进展第12-14页
        1.3.2 体腔细胞的功能第14-15页
    1.4 Ca~(2+)信号与细胞凋亡第15-18页
        1.4.1 Ca~(2+)的调控作用第15页
        1.4.2 细胞凋亡第15-16页
        1.4.3 Ca~(2+)信号与细胞凋亡第16页
        1.4.4 Ca~(2+)-ATP酶第16-17页
        1.4.5 钙调神经磷酸酶第17页
        1.4.6 钙调蛋白分解酶第17-18页
    1.5 内质网应激与细胞凋亡第18-21页
        1.5.1 钙网蛋白第18-19页
        1.5.2 内质网应激第19页
        1.5.3 内质网应激介导的细胞保护作用机制第19-20页
        1.5.4 内质网应激介导的细胞凋亡作用机制第20-21页
    1.6 流式细胞术第21-22页
    1.7 激光共聚焦技术第22页
    1.8 本课题主要研究内容及意义第22-24页
第二章 材料与方法第24-39页
    2.1 实验材料第24-28页
        2.1.1 实验原料第24页
        2.1.2 实验仪器第24-25页
        2.1.3 实验试剂第25-27页
        2.1.4 试剂配制第27-28页
    2.2 实验方法第28-39页
        2.2.1 体腔细胞的制备第28页
        2.2.2 UVA诱导刺参自溶过程中Ca~(2+)参与调控体腔细胞凋亡实验条件的建立第28-29页
        2.2.3 细胞毒理学实验-MTT法第29页
        2.2.4 体腔细胞内Ca~(2+)浓度的测定第29-30页
        2.2.5 体腔细胞中全蛋白的提取第30页
        2.2.6 考马斯亮蓝法测定体腔细胞中蛋白含量第30-31页
        2.2.7 体腔细胞Ca~(2+)-ATP酶活力的测定第31-32页
        2.2.8 体腔细胞钙调神经磷酸酶活力的测定第32-33页
        2.2.9 体腔细胞钙调蛋白分解酶活力的测定第33页
        2.2.10 体腔细胞凋亡率的测定第33页
        2.2.11 内质网应激介导细胞凋亡相关因子的测定第33-38页
        2.2.12 数据统计第38-39页
第三章 结果与讨论第39-63页
    3.1 UVA诱导刺参自溶过程中Ca~(2+)参与调控体腔细胞凋亡的实验条件第39-40页
    3.2 BAPTA-Na对刺参体腔细胞毒性实验第40-41页
    3.3 UVA对刺参体壁组织的影响第41-42页
    3.4 UVA诱导刺参自溶过程中对体腔细胞内Ca~(2+)浓度的影响第42-45页
        3.4.1 LSCM检测刺参体腔细胞内Ca~(2+)浓度的变化情况第42-44页
        3.4.2 FCM检测刺参体腔细胞内Ca~(2+)浓度的变化情况第44-45页
    3.5 UVA诱导刺参自溶过程中对Ca~(2+)信号相关酶活力的影响第45-48页
        3.5.1 刺参体腔细胞Ca~(2+)-ATP酶活力的变化情况第45-47页
        3.5.2 刺参体腔细胞钙调神经磷酸酶和钙调蛋白分解酶活力的变化情况第47-48页
    3.6 UVA诱导刺参自溶过程中对体腔细胞凋亡率的影响第48-50页
    3.7 Ca~(2+)信号与内质网应激第50-51页
    3.8 内质网应激介导刺参体腔细胞凋亡的研究第51-63页
        3.8.1 钙网蛋白(CRT)表达的变化情况第51-55页
        3.8.2 Caspase-12、Caspase-9和Caspase-3表达的变化情况第55-59页
        3.8.3 CHOP和Bcl-2表达的变化情况第59-63页
第四章 结论第63-64页
参考文献第64-74页
致谢第74-75页
附录第75页

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