摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 引言 | 第12-21页 |
1.1 秘鲁鱿鱼概述 | 第12-13页 |
1.1.1 秘鲁鱿鱼资源概述 | 第12页 |
1.1.2 鱿鱼加工现状 | 第12-13页 |
1.2 肌原纤维蛋白的组成及其功能性 | 第13-15页 |
1.3 蛋白质分离纯化方法选择 | 第15-18页 |
1.3.1 蛋白质分离纯化的一般原则 | 第15页 |
1.3.2 目标蛋白分离纯化的一般步骤 | 第15-16页 |
1.3.3 蛋白质分离纯化的色谱技术 | 第16-18页 |
1.4 蛋白质纯度的鉴定 | 第18页 |
1.5 本文研究目的、意义和主要内容 | 第18-21页 |
1.5.1 研究目的及意义 | 第18-19页 |
1.5.2 主要内容 | 第19-21页 |
2 秘鲁鱿鱼肌原纤维蛋白的分离纯化 | 第21-42页 |
2.1 引言 | 第21-22页 |
2.2 实验材料与设备 | 第22-23页 |
2.2.1 原料 | 第22页 |
2.2.2 主要试剂 | 第22页 |
2.2.3 主要仪器 | 第22-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-29页 |
2.3.1 肌原纤维蛋白的提取 | 第23页 |
2.3.2 肌原纤维蛋白溶液的配制 | 第23-24页 |
2.3.3 用考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质浓度 | 第24页 |
2.3.4 秘鲁鱿鱼肌原纤维蛋白纯化流程 | 第24页 |
2.3.5 HiTrap Q FF 16离子交换层析 | 第24-26页 |
2.3.6 Surperdex~(TM) 200 10/300凝胶层析 | 第26-27页 |
2.3.7 纯度及分子量检测 | 第27-29页 |
2.4 结果与分析 | 第29-40页 |
2.4.1 PM、TM及MLC蛋白的分离与纯化 | 第29-35页 |
2.4.2 肌动蛋白的分离与纯化 | 第35-39页 |
2.4.3 MALDI-TOF-MS蛋白鉴定结果 | 第39-40页 |
2.5 小结 | 第40-42页 |
3 超滤浓缩过程中蛋白分子集聚现象的发现与研究 | 第42-55页 |
3.1 引言 | 第42页 |
3.2 实验材料与设备 | 第42-43页 |
3.2.1 原料 | 第42页 |
3.2.2 主要试剂 | 第42页 |
3.2.3 主要仪器 | 第42-43页 |
3.3 实验方法 | 第43-44页 |
3.3.1 荧光显微镜对蛋白溶液微观结构的观察 | 第43页 |
3.3.2 动态光散射粒径分析 | 第43页 |
3.3.3 紫外光谱分析 | 第43-44页 |
3.3.4 荧光光谱分析 | 第44页 |
3.3.5 圆二色谱分析 | 第44页 |
3.4 结果与分析 | 第44-53页 |
3.4.1 荧光显微镜微观结构观察 | 第44-47页 |
3.4.2 动态光散射粒径分析 | 第47-48页 |
3.4.3 纤维丝聚集体组成成分分析 | 第48-49页 |
3.4.4 紫外光谱分析 | 第49-50页 |
3.4.5 荧光光谱分析 | 第50-52页 |
3.4.6 圆二色谱分析 | 第52-53页 |
3.5 小结 | 第53-55页 |
4 副肌球蛋白分子间的相互作用研究 | 第55-62页 |
4.1 引言 | 第55页 |
4.2 实验材料与设备 | 第55-56页 |
4.2.1 原料 | 第55页 |
4.2.2 主要试剂 | 第55页 |
4.2.3 主要仪器 | 第55-56页 |
4.3 实验方法 | 第56-57页 |
4.3.1 蛋白质浓度的测定 | 第56页 |
4.3.2 动态光散射粒径的测定 | 第56页 |
4.3.3 副肌球蛋白渗透第二维里系数及重均分子量的测定 | 第56-57页 |
4.3.4 盐浓度对副肌球蛋白渗透第二维里系数的影响 | 第57页 |
4.3.5 紫外光谱扫描 | 第57页 |
4.4 结果与分析 | 第57-61页 |
4.4.1 动态光散射粒径分析 | 第57-58页 |
4.4.2 副肌球蛋白渗透第二维里系数及重均分子量的测定 | 第58-59页 |
4.4.3 盐浓度对副肌球蛋白渗透第二维里系数的影响 | 第59-60页 |
4.4.4 盐浓度对副肌球蛋白构象的影响 | 第60-61页 |
4.5 小结 | 第61-62页 |
5 结论、创新点与展望 | 第62-64页 |
5.1 结论 | 第62-63页 |
5.2 创新点 | 第63页 |
5.3 展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-73页 |
致谢 | 第73-74页 |