| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第1章 引言 | 第13-23页 |
| 1.1 果胶酶和糖化酶的固定化研究现状 | 第13-14页 |
| 1.1.1 果胶酶及其固定化研究现状 | 第13页 |
| 1.1.2 糖化酶及其固定化研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2 酶的固定化 | 第14-18页 |
| 1.2.1 固定化酶的概述 | 第14页 |
| 1.2.2 固定化酶方法 | 第14-16页 |
| 1.2.3 固定化酶载体材料 | 第16-18页 |
| 1.3 海藻酸钠和氧化石墨烯作为固定化载体材料 | 第18-20页 |
| 1.3.1 海藻酸钠载体材料在固定化酶中的应用 | 第18-19页 |
| 1.3.2 氧化石墨烯载体材料在固定化酶中的应用 | 第19-20页 |
| 1.4 固定化酶在果汁生产中的应用 | 第20-21页 |
| 1.5 立题依据及研究内容 | 第21-23页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第21页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 固定化果胶酶制备工艺的研究 | 第23-41页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第23-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 果胶酶活力的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.2 固定化效果的评价参数: | 第26页 |
| 2.2.3 氧化石墨烯的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.4 海藻酸钠/氧化石墨烯小球的制备 | 第27页 |
| 2.2.5 海藻酸钠/氧化石墨烯小球的不同活化方法 | 第27页 |
| 2.2.6 海藻酸钠/氧化石墨烯小球固定化果胶酶 | 第27-28页 |
| 2.2.7 果胶酶固定化条件的选择 | 第28页 |
| 2.2.8 果胶酶固定化条件优化 | 第28页 |
| 2.3 数据处理与分析 | 第28-29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-39页 |
| 2.4.1 不同活化剂对果胶酶固定化的影响 | 第29-32页 |
| 2.4.2 果胶酶的固定化条件选择 | 第32-34页 |
| 2.4.3 响应面法优化果胶酶固定化条件 | 第34-39页 |
| 2.4.4 验证试验 | 第39页 |
| 2.5 小结 | 第39-41页 |
| 第3章 固定化果胶酶酶学性质研究 | 第41-52页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第41-42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 3.2.1 固定化果胶酶表观分析 | 第42-43页 |
| 3.2.2 固定化果胶酶动力学参数测定 | 第43页 |
| 3.2.3 固定化酶的热稳定性 | 第43-44页 |
| 3.2.4 固定化酶的重复使用性 | 第44页 |
| 3.3 数据处理与分析 | 第44页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第44-51页 |
| 3.4.1 固定化果胶酶表观分析 | 第44-47页 |
| 3.4.2 固定化果胶酶动力学参数测定 | 第47-49页 |
| 3.4.3 固定化酶的热稳定性 | 第49-50页 |
| 3.4.4 固定化酶的重复使用性 | 第50-51页 |
| 3.5 小结 | 第51-52页 |
| 第4章 双酶固定化工艺参数及酶学性质研究 | 第52-64页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第52-53页 |
| 4.2 试验方法 | 第53-56页 |
| 4.2.1 糖化酶活力的测定 | 第53-54页 |
| 4.2.2 果胶酶活力的测定 | 第54页 |
| 4.2.3 共固定化双酶的制备 | 第54-55页 |
| 4.2.4 双酶共固定化条件的选择 | 第55页 |
| 4.2.5 正交实验对共固定化条件的优化 | 第55页 |
| 4.2.6 共固定化双酶的酶学性质研究 | 第55-56页 |
| 4.2.7 共固定化酶的热稳定性 | 第56页 |
| 4.2.8 共固定化酶的操作稳定性 | 第56页 |
| 4.3 数据处理与分析 | 第56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-63页 |
| 4.4.1 双酶共固定化条件的选择 | 第56-58页 |
| 4.4.2 双酶固定化条件正交优化结果 | 第58-59页 |
| 4.4.3 验证实验 | 第59-61页 |
| 4.4.4 共固定化双酶的酶学性质研究 | 第61-62页 |
| 4.4.5 共固定化酶和游离酶的热稳定性 | 第62页 |
| 4.4.6 共固定化酶的操作稳定性 | 第62-63页 |
| 4.5 小结 | 第63-64页 |
| 第5章 固定化双酶酶解南瓜-山楂复合汁 | 第64-77页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第64-65页 |
| 5.2 试验测定方法 | 第65-69页 |
| 5.2.1 透光率的测定 | 第65页 |
| 5.2.2 还原糖含量的测定 | 第65页 |
| 5.2.3 可溶性固形物含量的测定 | 第65页 |
| 5.2.4 可溶性糖含量的测定 | 第65-66页 |
| 5.2.5 可溶性酸含量的测定 | 第66页 |
| 5.2.6 蛋白质含量的测定 | 第66-67页 |
| 5.2.7 果胶含量的测定 | 第67页 |
| 5.2.8 酶解南瓜-山楂汁 | 第67-68页 |
| 5.2.9 正交实验确定酶解最优条件 | 第68页 |
| 5.2.10 酶解前后南瓜-山楂汁中的变化 | 第68-69页 |
| 5.3 数据处理与分析 | 第69页 |
| 5.4 实验结果 | 第69-76页 |
| 5.4.1 加酶量的选择 | 第69-71页 |
| 5.4.2 酶解时间的选择 | 第71-72页 |
| 5.4.3 酶解温度的选择 | 第72-73页 |
| 5.4.4 正交实验 | 第73-76页 |
| 5.4.5 验证试验 | 第76页 |
| 5.4.6 酶解前后南瓜-山楂汁的变化 | 第76页 |
| 5.5 小结 | 第76-77页 |
| 第6章 结论、创新点与展望 | 第77-79页 |
| 6.1 结论 | 第77-78页 |
| 6.2 创新点 | 第78页 |
| 6.3 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 附录一 缩略语表 | 第90-91页 |
| 附录二 硕士期间发表的论文 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |