| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 前言 | 第9-17页 |
| 1.1 德氏乳杆菌的研究进展 | 第9-10页 |
| 1.1.1 德氏乳杆菌概述 | 第9页 |
| 1.1.2 德氏乳杆菌的应用 | 第9-10页 |
| 1.2 益生菌微胶囊化的意义 | 第10-11页 |
| 1.3 益生菌微胶囊化常用的壁材 | 第11-15页 |
| 1.3.1 大豆分离蛋白(SPI) | 第11-13页 |
| 1.3.2 果胶(Pectin) | 第13-15页 |
| 1.4 益生菌微胶囊化的研究进展及现阶段存在问题 | 第15-16页 |
| 1.5 本研究的立题依据及目的意义 | 第16-17页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第16页 |
| 1.5.2 目的意义 | 第16-17页 |
| 第2章 德氏乳杆菌的大豆分离蛋白-高甲氧基果胶复合微胶囊的研制及条件优化 | 第17-35页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.1 菌种 | 第17页 |
| 2.1.2 培养基 | 第17页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第17页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第17-18页 |
| 2.1.5 主要试剂配制 | 第18页 |
| 2.2 德氏乳杆菌的大豆分离蛋白-高甲氧基果胶复合微胶囊的制备 | 第18-19页 |
| 2.2.1 德氏乳杆菌生长曲线的测定 | 第18-19页 |
| 2.2.2 大豆分离蛋白(SPI)球蛋白含量的测定 | 第19页 |
| 2.3 德氏乳杆菌复合微胶囊技术最佳工艺的摸索 | 第19-22页 |
| 2.3.1 SPI的浓度对包埋数的影响 | 第21页 |
| 2.3.2 高甲氧基果胶(HMP)的浓度对包埋数的影响 | 第21页 |
| 2.3.3 SPI溶液与HMP溶液的体积比对包埋数的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.4 SPI和HMP的复合液与菌悬液的体积比对包埋数的影响 | 第22页 |
| 2.4 复合微胶囊在模拟人体消化道环境中的释放 | 第22-24页 |
| 2.4.1 SPI的浓度对释放数的影响 | 第22-23页 |
| 2.4.2 高甲氧基果胶(HMP)的浓度对释放数的影响 | 第23页 |
| 2.4.3 SPI溶液与HMP溶液的体积比对释放数的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.4 SPI和HMP的复合液与菌悬液的体积比对释放数的影响 | 第24页 |
| 2.5 结果 | 第24-31页 |
| 2.5.1 L.delbrueckii的生长曲线绘制 | 第24-25页 |
| 2.5.2 SPI溶液中球蛋白的含量 | 第25-26页 |
| 2.5.3 SPI微胶囊最佳工艺条件的确定 | 第26-31页 |
| 2.6 讨论 | 第31-33页 |
| 2.7 小结 | 第33-35页 |
| 第3章 复合微胶囊结构表征 | 第35-46页 |
| 3.1 主要试剂 | 第35页 |
| 3.2 主要仪器 | 第35页 |
| 3.3 SPI及SPI-HMP不同复合物的制备 | 第35-36页 |
| 3.4 复合微胶囊的结构表征 | 第36-37页 |
| 3.4.1 扫描电镜(SEM)观察 | 第36页 |
| 3.4.2 红外光谱分析(FTIR) | 第36页 |
| 3.4.3 热重(TG)分析 | 第36页 |
| 3.4.4 差示扫描量热(DSC)分析 | 第36-37页 |
| 3.4.5 圆二色谱(CD)分析 | 第37页 |
| 3.4.6 Zeta电位、粒径分析 | 第37页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.5.1 SEM结果 | 第37-38页 |
| 3.5.2 傅立叶红外光谱分析(FTIR) | 第38-40页 |
| 3.5.3 热重(TG)分析 | 第40-41页 |
| 3.5.4 差热(DSC)分析 | 第41-42页 |
| 3.5.5 圆二色谱(CD)分析 | 第42-43页 |
| 3.5.6 Zeta电位、粒径分析 | 第43-44页 |
| 3.6 小结 | 第44-46页 |
| 第4章 结论 | 第46-47页 |
| 第5章 本论文的主要创新点及下一步实验计划 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 攻读学位期间发表的论文及申请专利 | 第58-59页 |
