| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-28页 |
| 1.1 脂肪酶概述 | 第16-21页 |
| 1.1.1 脂肪酶的特异性 | 第16-18页 |
| 1.1.1.1 脂肪酶的位置特异性 | 第16-17页 |
| 1.1.1.2 脂肪酶的立体特异性 | 第17页 |
| 1.1.1.3 脂肪酶的底物特异性 | 第17-18页 |
| 1.1.2 反应环境介质体系对酶促反应位置选择性的影响 | 第18-20页 |
| 1.1.2.1 无溶剂体系 | 第18页 |
| 1.1.2.2 有机相体系 | 第18-19页 |
| 1.1.2.3 超临界流体体系 | 第19页 |
| 1.1.2.4 反胶束体系 | 第19页 |
| 1.1.2.5 离子液体体系 | 第19页 |
| 1.1.2.6 低共熔溶剂体系 | 第19-20页 |
| 1.1.3 物理辅助处理对酶促反应位置选择性的影响 | 第20-21页 |
| 1.1.3.1 微波处理对酶促反应位置选择性的影响 | 第20页 |
| 1.1.3.2 超声处理对酶促反应位置选择性的影响 | 第20-21页 |
| 1.2 结构脂质的概述 | 第21-22页 |
| 1.2.1 结构脂质的介绍 | 第21页 |
| 1.2.2 结构脂质的制备方法 | 第21-22页 |
| 1.2.2.1 化学法 | 第21页 |
| 1.2.2.2 生物酶法 | 第21-22页 |
| 1.3 长碳链多不饱和脂肪酸的概述 | 第22-24页 |
| 1.3.1 多不饱和脂肪酸的生理功能及研究现状 | 第22-23页 |
| 1.3.2 多不饱和脂肪酸的纯化方法 | 第23-24页 |
| 1.3.2.1 分子蒸馏法 | 第23页 |
| 1.3.2.2 低温结晶法 | 第23页 |
| 1.3.2.3 超临界流体萃取法 | 第23-24页 |
| 1.3.2.4 脂肪酶富集法 | 第24页 |
| 1.3.2.5 色谱分离法 | 第24页 |
| 1.3.2.6 尿素包埋法 | 第24页 |
| 1.4 结构脂质的鉴定及剖析方法 | 第24-27页 |
| 1.4.1 胰脂肪酶与薄层色谱法 | 第25页 |
| 1.4.2 衍生化试剂法 | 第25页 |
| 1.4.3 胰脂肪酶与液相色谱法 | 第25-26页 |
| 1.4.4 核磁共振法 | 第26页 |
| 1.4.5 银离子色谱法 | 第26页 |
| 1.4.6 高效液相色谱-质谱联用法 | 第26-27页 |
| 1.5 课题研究的目的和意义 | 第27页 |
| 1.6 课题研究的内容 | 第27-28页 |
| 第二章 固相萃取和气相色谱联用测定结构脂 α、β 位置脂肪酸及甘油酯组成 | 第28-37页 |
| 2.1 实验仪器与试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第29页 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 脂肪酸缩写说明 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 2.2.1 甘油酯标准品及实际样品的配制 | 第30页 |
| 2.2.1.1 酶法合成ARA-DAG的样品制备 | 第30页 |
| 2.2.1.2 甘油酯标准品的配制 | 第30页 |
| 2.2.1.3 猪油及高芥酸菜籽油胰脂肪酶水解产物的制备 | 第30页 |
| 2.2.2 固相萃取洗脱条件的优化 | 第30页 |
| 2.2.3 薄层色谱检测 | 第30-31页 |
| 2.2.4 气相色谱检测 | 第31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 2.3.1 固相萃取-气相色谱联用分离结构脂质混合物 | 第31-32页 |
| 2.3.2 固相萃取-气相色谱联用分离甘油酯标准品混合物 | 第32-33页 |
| 2.3.3 固相萃取-气相色谱联用测定猪油及高芥酸菜籽油 β 位置脂肪酸组成 | 第33-36页 |
| 2.4 结论 | 第36-37页 |
| 第三章 超声物理辅助酶法合成OPO型SLS的机理研究 | 第37-49页 |
| 3.1 仪器和试剂 | 第38页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第38页 |
| 3.1.2 实验材料与试剂 | 第38页 |
| 3.2 实验条件和方法 | 第38-40页 |
| 3.2.1 超声预处理酶法酸解反应合成OPO型SLs | 第38页 |
| 3.2.2 脂肪酶的重复使用性研究 | 第38-39页 |
| 3.2.3 Ag+-HPLC-APCI-MS/MS定量分析结构脂质产物TAG | 第39-40页 |
| 3.2.4 酶促反应动力学常数的测定 | 第40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-48页 |
| 3.3.1 Ag+-HPLC-APCI-MS/MS定量分析结构脂质产物TAG | 第40-41页 |
| 3.3.2 不同脂肪酶在超声预处理条件下对产物中OPO含量的影响 | 第41页 |
| 3.3.3 超声功率对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4 超声时间对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.5 超声脉冲模式对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第43页 |
| 3.3.6 酶促反应底物摩尔比对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.7 酶促反应脂肪酶添加量对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.8 酶促反应温度对产物中OPO含量及酰基转移率的影响 | 第45页 |
| 3.3.9 脂肪酶的重复使用结果 | 第45-46页 |
| 3.3.10 最优条件下超声预处理与常规磁力搅拌方法对比 | 第46-47页 |
| 3.3.11 酶促酸解反应动力学模型 | 第47-48页 |
| 3.4 结论 | 第48-49页 |
| 第四章 LC-PUFAS纯化方法的建立及酶法合成APA型结构脂的研究 | 第49-65页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第49-50页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第49-50页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 4.2.1 微生物菌油乙酯化反应研究 | 第50-51页 |
| 4.2.2 尿素包埋法富集纯化ARA-乙酯的研究 | 第51页 |
| 4.2.3 酶促反应合成APA型结构脂的单因素实验研究 | 第51页 |
| 4.2.4 酶促反应合成APA型结构脂的响应面实验设计 | 第51页 |
| 4.2.5 结构脂产物中TAGs的分离及其脂肪酸组成分析 | 第51-52页 |
| 4.2.6 结构脂产物中sn-2 位脂肪酸组成分析 | 第52页 |
| 4.2.7 结构脂产物中总的TAG组成分析 | 第52-53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-64页 |
| 4.3.1 微生物菌油尿素包埋前后脂肪酸组成分析 | 第53-54页 |
| 4.3.2 酶促反应合成APA型结构脂的单因素实验分析与结果 | 第54-56页 |
| 4.3.2.1 酶促反应时间对ARA插入率的影响 | 第54页 |
| 4.3.2.2 酶促反应底物摩尔比对ARA插入率的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.2.3 脂肪酶添加量对ARA插入率的影响 | 第55-56页 |
| 4.3.2.4 酶促反应温度对ARA插入率的影响 | 第56页 |
| 4.3.3 酶促反应合成APA型结构脂响应面实验优化 | 第56-63页 |
| 4.3.3.1 统计分析结果 | 第56-58页 |
| 4.3.3.2 响应面模型拟合 | 第58-59页 |
| 4.3.3.3 响应面方差分析 | 第59-60页 |
| 4.3.3.4 响应面条件优化及模型验证 | 第60-63页 |
| 4.3.4 最优条件下结构脂产物中总的TAG组成分析 | 第63-64页 |
| 4.4 结论 | 第64-65页 |
| 第五章 全文结论 | 第65-67页 |
| 5.1 固相萃取和气相色谱联用测定结构脂 α、β 位置脂肪酸及甘油酯组成条件 | 第65页 |
| 5.2 超声辅助酶促反应合成OPO结构脂的条件优化及动力学研究 | 第65-66页 |
| 5.3 LC-PUFAS纯化方法的建立及酶法合成APA型结构脂反应条件的优化 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 作者简历 | 第79页 |
| 硕士在读期间发表的科研论文 | 第79页 |
