| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-17页 |
| 1.1 刺参简介和生态学特征 | 第8页 |
| 1.2 海参的自溶 | 第8-10页 |
| 1.2.1 海参自溶的影响因素 | 第8-9页 |
| 1.2.2 海参的内源酶 | 第9页 |
| 1.2.3 组织蛋白酶与自溶的关系 | 第9-10页 |
| 1.3 分子生物学相关技术 | 第10-15页 |
| 1.3.1 PGR技术 | 第10页 |
| 1.3.2 引物设计原则 | 第10-11页 |
| 1.3.3 凝胶电泳及凝胶成像和定量分析技术 | 第11页 |
| 1.3.4 本研究中涉及的基因 | 第11-12页 |
| 1.3.5 相关基因的功能 | 第12-15页 |
| 1.4 立题背景和意义 | 第15页 |
| 1.5 本论文研究的主要内容 | 第15-17页 |
| 第二章 消化酶抑制剂对海参肠自溶过程的影响及组分测定 | 第17-28页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第18-19页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.2.3.1 水分、灰分测定方法 | 第19页 |
| 2.2.3.2 总糖测定方法 | 第19-20页 |
| 2.2.3.3 总蛋白测定方法 | 第20-21页 |
| 2.2.3.4 粗脂肪测定方法 | 第21页 |
| 2.2.3.5 TCA可溶性寡肽的测定方法 | 第21页 |
| 2.2.3.6 蛋白酶对海参肠自溶中TCA可溶性寡肽释放的影响 | 第21-22页 |
| 2.2.3.7 3,5-二硝基水样酸法测还原糖 | 第22页 |
| 2.2.3.8 淀粉酶对海参肠自溶中还原糖释放的影响 | 第22页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第22-26页 |
| 2.3.1 标准曲线 | 第22-23页 |
| 2.3.2 海参肠冻干粉的化学组成 | 第23页 |
| 2.3.3 蛋白酶对海参肠自溶中TCA可溶性寡肽释放的影响 | 第23-25页 |
| 2.3.4 淀粉酶对海参肠自溶中还原糖释放的影响 | 第25-26页 |
| 2.4 本章小结 | 第26-28页 |
| 第三章 紫外照射诱导海参肠部分基因的表达变化研究 | 第28-47页 |
| 3.1 前言 | 第28页 |
| 3.2 材料与方法 | 第28-36页 |
| 3.2.1 原料与试剂 | 第28-29页 |
| 3.2.2 主要试剂的配制 | 第29-30页 |
| 3.2.2.1 50倍TAE缓冲液的配制 | 第29页 |
| 3.2.2.2 反转录反应中溶液的配制 | 第29页 |
| 3.2.2.3 PCR反应中溶液的配制 | 第29-30页 |
| 3.2.2.4 染色液的配制 | 第30页 |
| 3.2.3 主要实验设备 | 第30页 |
| 3.2.4 设计的引物 | 第30-33页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.5.1 原料的预处理 | 第33页 |
| 3.2.5.2 总RNA的提取 | 第33-34页 |
| 3.2.5.3 RNA逆转录 | 第34-35页 |
| 3.2.5.4 PCR反应 | 第35页 |
| 3.2.5.5 凝胶、电泳及成像 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-46页 |
| 3.3.1 提取的RNA的纯度比较 | 第36页 |
| 3.3.2 相关基因电泳结果分析图 | 第36-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
