摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 绪论 | 第9-18页 |
1.1 花生及花生油 | 第9-12页 |
1.1.1 花生 | 第9-10页 |
1.1.2 花生子叶细胞结构特征 | 第10-11页 |
1.1.3 花生油 | 第11页 |
1.1.4 花生油传统提取技术 | 第11-12页 |
1.2 热处理技术 | 第12-14页 |
1.2.1 传统加热技术 | 第12页 |
1.2.2 微波辐射加热技术 | 第12-13页 |
1.2.3 红外辐射加热技术 | 第13-14页 |
1.3 水酶法植物油提取技术 | 第14-16页 |
1.3.1 水酶法油脂释放机理 | 第14页 |
1.3.2 水酶法提油技术研究进展及现状 | 第14-15页 |
1.3.3 水酶法提油生成的乳状液的相关研究进展及现状 | 第15-16页 |
1.4 立题背景及意义 | 第16页 |
1.5 课题主要研究内容 | 第16-18页 |
2 材料与方法 | 第18-27页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第18-19页 |
2.1.1 实验材料 | 第18页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-27页 |
2.2.1 花生基本成分测定 | 第19页 |
2.2.2 花生烘烤及粉碎 | 第19页 |
2.2.3 粉碎花生的粒径分布 | 第19页 |
2.2.4 水酶法工艺过程 | 第19-20页 |
2.2.5 水酶法工艺条件优化 | 第20-21页 |
2.2.6 花生子叶微观结构的表征 | 第21页 |
2.2.7 花生油基本理化指标的测定 | 第21页 |
2.2.8 花生油氧化稳定性的评价 | 第21-22页 |
2.2.9 花生油微量成分含量的测定 | 第22页 |
2.2.10 花生油脂肪酸组成的测定 | 第22-23页 |
2.2.11 花生蛋白的制备 | 第23页 |
2.2.12 蛋白水解度的测定 | 第23页 |
2.2.13 蛋白表面疏水性的测定 | 第23-24页 |
2.2.14 蛋白功能性质的测定 | 第24页 |
2.2.15 蛋白的相对分子质量分布分析 | 第24页 |
2.2.16 还原态Tricine SDS-PAGE分析 | 第24-25页 |
2.2.17 水酶法提取不同阶段乳状液的制备 | 第25页 |
2.2.18 乳状液界面蛋白的制备 | 第25页 |
2.2.19 乳状液微观结构的表征 | 第25页 |
2.2.20 乳状液粒径的测定 | 第25页 |
2.2.21 乳状液成分分析 | 第25-26页 |
2.2.22 数据处理与分析 | 第26-27页 |
3 结果与讨论 | 第27-47页 |
3.1 预烘烤对水酶法花生油提取效率与品质的影响 | 第27-35页 |
3.1.1 花生基本成分分析 | 第27-28页 |
3.1.2 预烘烤对花生水酶法提油的得油率的影响 | 第28页 |
3.1.3 水酶法提取花生油工艺条件优化 | 第28-31页 |
3.1.4 花生油脂肪酸组成的比较分析 | 第31-32页 |
3.1.5 花生油基本理化指标的比较分析 | 第32页 |
3.1.6 花生油微量成分含量的比较分析 | 第32-34页 |
3.1.7 花生油氧化稳定性的比较分析 | 第34-35页 |
3.2 预烘烤对水酶法提油过程中花生油释放行为的影响 | 第35-40页 |
3.2.1 预烘烤对花生子叶细胞微观结构的影响 | 第35-37页 |
3.2.2 预烘烤对花生粉碎程度的影响 | 第37-38页 |
3.2.3 预烘烤对水酶法过程中花生油释放过程的影响 | 第38-39页 |
3.2.4 预烘烤对花生蛋白的表面疏水性及功能性质的影响 | 第39-40页 |
3.3 水酶法提油过程中花生油的乳化行为及乳状液稳定机制 | 第40-47页 |
3.3.1 酶解时间对水酶法得油率及蛋白水解度的影响 | 第41页 |
3.3.2 乳状液微观结构的表征 | 第41-42页 |
3.3.3 酶解提取后花生子叶微观结构的表征 | 第42-43页 |
3.3.4 还原态Tricine SDS-PAGE分析 | 第43-44页 |
3.3.5 乳状液界面蛋白相对分子质量分布的变化 | 第44-45页 |
3.3.6 水酶法过程中乳状液组成的变化 | 第45-47页 |
主要结论与展望 | 第47-48页 |
致谢 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第55页 |