| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 0 前言 | 第13-23页 |
| 0.1 海洋调味品的研究和发展现状 | 第13-16页 |
| 0.1.1 海洋调味品的原料 | 第13页 |
| 0.1.2 海洋调味品的风味及营养 | 第13页 |
| 0.1.3 海洋调味品的分类 | 第13-14页 |
| 0.1.4 常见的海洋调味品的加工技术 | 第14-16页 |
| 0.2 鳀鱼的概述 | 第16-18页 |
| 0.2.1 鳀鱼介绍 | 第16-17页 |
| 0.2.2 鳀鱼调味品的研究现状 | 第17-18页 |
| 0.3 海洋生物活性肽 | 第18-21页 |
| 0.3.1 海洋生物活性肽的介绍 | 第18页 |
| 0.3.2 海洋生物活性肽的功能 | 第18-20页 |
| 0.3.3 海洋生物活性肽的制备方法 | 第20-21页 |
| 0.4 本课题的立题背景和意义、研究内容和创新点 | 第21-23页 |
| 0.4.1 本课题的立题背景和意义 | 第21-22页 |
| 0.4.2 本课题研究的主要内容 | 第22页 |
| 0.4.3 本课题的创新点 | 第22-23页 |
| 1 鳀鱼低盐固态发酵工艺的研究 | 第23-50页 |
| 1.1 引言 | 第23页 |
| 1.2 实验材料与仪器 | 第23-24页 |
| 1.2.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第24页 |
| 1.3 实验内容与方法 | 第24-35页 |
| 1.3.1 鳀鱼低盐固态发酵工艺流程 | 第24-26页 |
| 1.3.2 实验方法 | 第26-35页 |
| 1.4 实验结果 | 第35-48页 |
| 1.4.1 酱油制曲条件单因素优化 | 第35-37页 |
| 1.4.2 两种工艺酱油曲的比较 | 第37-39页 |
| 1.4.3 发酵条件响应面优化 | 第39-42页 |
| 1.4.4 各项化学指标的测定 | 第42-43页 |
| 1.4.5 游离氨基酸分析 | 第43-44页 |
| 1.4.6 挥发性风味物质分析 | 第44-47页 |
| 1.4.7 感官评定 | 第47-48页 |
| 1.5 小结 | 第48-50页 |
| 2 鳀鱼酶催化-纯种液态发酵工艺的研究 | 第50-61页 |
| 2.1 引言 | 第50页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第50-51页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第50-51页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第51页 |
| 2.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 2.3.1 鳀鱼酶催化-纯种液态发酵工艺流程 | 第51-52页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第53-60页 |
| 2.4.1 发酵条件的响应面优化 | 第53-56页 |
| 2.4.2 各项化学指标的测定 | 第56-57页 |
| 2.4.3 游离氨基酸的测定 | 第57-58页 |
| 2.4.4 挥发性风味物质分析 | 第58-60页 |
| 2.4.5 感官评定 | 第60页 |
| 2.5 小结 | 第60-61页 |
| 3 鳀鱼调味汁中抗氧化肽的分离纯化与鉴定 | 第61-73页 |
| 3.1 引言 | 第61页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第61-62页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第61-62页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第62页 |
| 3.3 实验内容与方法 | 第62-64页 |
| 3.3.1 抗氧化肽分离纯化流程 | 第62-63页 |
| 3.3.2 分离多肽组份纯度的测定 | 第63-64页 |
| 3.3.3 抗氧化肽的分子量及氨基酸序列的测定 | 第64页 |
| 3.3.4 多肽氨基酸组成的测定 | 第64页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第64-72页 |
| 3.4.1 Sephadex G-15 凝胶柱层析 | 第64-65页 |
| 3.4.2 DEAE-Sepharose FF 离子交换柱分离 | 第65-66页 |
| 3.4.3 RP-HPLC C18半制备柱分离 | 第66-67页 |
| 3.4.4 f_2和 f_3纯度的测定 | 第67-68页 |
| 3.4.5 f_3分子量及氨基酸序列的测定 | 第68-69页 |
| 3.4.6 f_3氨基酸组成分析 | 第69页 |
| 3.4.7 f_2和 f_3的来源分析 | 第69-72页 |
| 3.5 小结 | 第72-73页 |
| 4 抗氧化肽 f_3的神经细胞损伤活性评价 | 第73-78页 |
| 4.1 引言 | 第73页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第73-74页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第73页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第73-74页 |
| 4.3 实验内容与方法 | 第74-75页 |
| 4.3.1 实验药物的制备 | 第74页 |
| 4.3.2 PC12 神经细胞的培养 | 第74页 |
| 4.3.3 筛选谷氨酸盐最佳成模浓度 | 第74页 |
| 4.3.4 多肽 f_3对谷氨酸损伤 PC12 细胞模型存活率的影响 | 第74页 |
| 4.3.5 统计学分析 | 第74-75页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第75-77页 |
| 4.4.1 不同浓度谷氨酸对 PC12 神经细胞存活率的影响 | 第75页 |
| 4.4.2 不同浓度的 f_3对谷氨酸盐损伤 PC12 细胞存活率的影响 | 第75-76页 |
| 4.4.3 细胞形态学观察 | 第76-77页 |
| 4.5 小结 | 第77-78页 |
| 5 结论与展望 | 第78-80页 |
| 5.1 结论 | 第78-79页 |
| 5.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 个人简历 | 第89页 |
| 发表的学术论文 | 第89-90页 |
