| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-25页 |
| 1.1 酸马奶概述 | 第10-18页 |
| 1.1.1 酸马奶历史渊源 | 第11页 |
| 1.1.2 酸马奶营养成分 | 第11-13页 |
| 1.1.3 酸马奶食疗价值 | 第13-14页 |
| 1.1.4 乳清蛋白基础研究进展 | 第14-18页 |
| 1.1.4.1 乳清蛋白主要组成部分概述 | 第14-17页 |
| 1.1.4.2 乳清生物活性肽简述 | 第17-18页 |
| 1.1.4.3 乳清蛋白产品 | 第18页 |
| 1.2 蛋白质电泳技术 | 第18-23页 |
| 1.2.1 SDS-PAGE电泳 | 第19-20页 |
| 1.2.2 双向电泳 | 第20-21页 |
| 1.2.3 毛细管电泳 | 第21页 |
| 1.2.4 SDS-PAGE电泳在酸乳清蛋白中的应用 | 第21-23页 |
| 1.3 本课题目的及意义 | 第23页 |
| 1.3.1 本课题目的 | 第23页 |
| 1.3.2 本课题意义 | 第23页 |
| 1.4 本课题内容 | 第23-25页 |
| 2 酸马奶中乳清蛋白检测条件的优化研究 | 第25-39页 |
| 2.1 试验材料及方法 | 第25-30页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1.1 酸马奶样品采集 | 第25页 |
| 2.1.1.2 试验试剂 | 第25页 |
| 2.1.1.3 试验仪器与软件 | 第25-26页 |
| 2.1.1.4 主要工作液配制 | 第26页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第26-30页 |
| 2.1.2.1 样品制备 | 第26-27页 |
| 2.1.2.2 电泳优化条件的建立及方法学验证 | 第27-30页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第30-39页 |
| 2.2.1 酸马奶乳清蛋白电泳体系的选择分析 | 第30-36页 |
| 2.2.1.1 酸马奶乳清蛋白浓度测定 | 第30页 |
| 2.2.1.2 分离胶浓度的确定 | 第30-31页 |
| 2.2.1.3 浓缩胶浓度选择 | 第31-32页 |
| 2.2.1.4 分离胶电压选择 | 第32-33页 |
| 2.2.1.5 上样体积选择 | 第33页 |
| 2.2.1.6 染色方法优化 | 第33-34页 |
| 2.2.1.7 SDS-PAGE电泳方法精确性确定 | 第34-35页 |
| 2.2.1.8 上样浓度选择 | 第35-36页 |
| 2.2.2 讨论 | 第36-39页 |
| 2.2.2.1 样品采集与样品制备 | 第36-37页 |
| 2.2.2.2 SDS-PAGE电泳分离胶浓度选择过程 | 第37页 |
| 2.2.2.3 电泳条件的确定 | 第37-39页 |
| 3 不同发酵时期酸马奶乳清蛋白SDS-PAGE电泳图谱建立及分析 | 第39-46页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第39-41页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.1.1 酸马奶样品采集 | 第39页 |
| 3.1.1.2 实验试剂 | 第39页 |
| 3.1.1.3 主要实验仪器 | 第39页 |
| 3.1.1.4 主要工作液配制 | 第39页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第39-41页 |
| 3.1.2.1 乳清蛋白样品的制备 | 第39页 |
| 3.1.2.2 SDS-PAGE电泳操作 | 第39-41页 |
| 3.1.2.3 获取酸马奶乳清蛋白电泳图及差异性蛋白分析 | 第41页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第41-46页 |
| 3.2.1 马奶及不同发酵时期酸马奶乳清样品的浓度测定 | 第41页 |
| 3.2.2 乳清蛋白各组分的分子量及差异蛋白条带统计 | 第41-43页 |
| 3.2.3 酸马奶乳清蛋白成分在发酵过程中的含量变化规律 | 第43-45页 |
| 3.2.4 讨论 | 第45-46页 |
| 4 总论与论文创新点 | 第46-48页 |
| 4.1 总论 | 第46-48页 |
| 4.2 本论文创新点 | 第48页 |
| 5 展望 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
