摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
1 前言 | 第9-14页 |
1.1 选题来源 | 第9页 |
1.2 核桃简述 | 第9页 |
1.3 多肽及抗氧化评定指标 | 第9-10页 |
1.4 活性肽的制备方法及超滤 | 第10页 |
1.5 宏基因组 | 第10-11页 |
1.6 16S rRNA | 第11页 |
1.7 操作分类单元(OTU) | 第11页 |
1.8 研究价值 | 第11-12页 |
1.9 国内外研究进展 | 第12-13页 |
1.10 本实验的创新和目的意义 | 第13页 |
1.11 本研究的基本内容 | 第13-14页 |
2 材料与方法 | 第14-21页 |
2.1 试验材料与试剂 | 第14-15页 |
2.1.1 试验原料 | 第14页 |
2.1.2 试剂 | 第14页 |
2.1.3 仪器与设备 | 第14-15页 |
2.2 试验方法 | 第15-21页 |
2.2.1 核桃分离蛋白的制备 | 第15页 |
2.2.2 核桃清蛋白的制备 | 第15页 |
2.2.3 核桃清蛋白的体外抗氧化活性研究 | 第15-16页 |
2.2.4 核桃清蛋白在小鼠体内的抗氧化活性研究 | 第16-17页 |
2.2.5 酶解核桃清蛋白单因素试验 | 第17-18页 |
2.2.6 响应面法优化核桃清蛋白酶解条件 | 第18页 |
2.2.7 核桃清蛋白抗氧化肽粗提物体外抗氧化性测定 | 第18页 |
2.2.8 核桃清蛋白抗氧化肽超滤 | 第18页 |
2.2.9 三种组分多肽体外抗氧化实验 | 第18-19页 |
2.2.10 核桃清蛋白抗氧化肽凝胶层析纯化 | 第19页 |
2.2.11 核桃清蛋白对小鼠肠道微生物菌群的影响 | 第19-20页 |
2.2.12 统计分析 | 第20-21页 |
3 结果与分析 | 第21-56页 |
3.1 核桃清蛋白的体外抗氧化活性研究 | 第21-23页 |
3.2 小鼠体内抗氧化试验 | 第23-32页 |
3.3 酶解核桃清蛋白单因素试验 | 第32-34页 |
3.3.1 酶解时间为变量的单因素试验 | 第32页 |
3.3.2 酶解pH值为变量的单因素试验 | 第32-33页 |
3.3.3 酶解加酶量为变量的单因素试验 | 第33页 |
3.3.4 酶解底物浓度为变量的单因素试验 | 第33-34页 |
3.3.5 酶解温度为变量的单因素试验 | 第34页 |
3.4 响应面法优化核桃清蛋白酶解试验 | 第34-38页 |
3.4.1 模型的建立与分析 | 第34-37页 |
3.4.2 显著性交互作用影响分析 | 第37-38页 |
3.4.3 验证试验 | 第38页 |
3.5 核桃清蛋白抗氧化肽粗提物抗氧化性测定 | 第38-40页 |
3.5.1 ABTS自由基清除能力的测定 | 第38页 |
3.5.2 DPPH自由基清除能的测定 | 第38-39页 |
3.5.3 羟基自由基(·OH)清除作用的测定 | 第39-40页 |
3.5.4 Fe~(2+)螯合能力的测定 | 第40页 |
3.6 核桃抗氧化肽的分离纯化 | 第40页 |
3.7 三种多肽组分的体外抗氧化活性研究 | 第40-41页 |
3.8 Sephadex G-25 凝胶层析 | 第41-43页 |
3.9 核桃清蛋白对小鼠肠道微生物菌群的影响 | 第43页 |
3.9.1 DNA检测电泳图 | 第43页 |
3.9.2 PCR扩增 | 第43页 |
3.10 OTU分析和物种注释 | 第43-49页 |
3.10.1 OTU聚类及物种注释概况 | 第43-45页 |
3.10.2 各样品在各分类水平上的序列数目情况 | 第45-46页 |
3.10.3 物种相对丰度展示 | 第46-48页 |
3.10.4 益生菌与有害菌相对丰度分析 | 第48-49页 |
3.11 样品复杂度分析(Alpha Diversity) | 第49-53页 |
3.11.1 物种积累曲线 | 第49-50页 |
3.11.2 物种多样性曲线 | 第50-51页 |
3.11.3 基于OTU的venn图 | 第51-53页 |
3.12 多样品比较分析(Beta Diversity) | 第53-56页 |
3.12.1 系统进化关系展示 | 第53-54页 |
3.12.2 PCoA分析 | 第54-56页 |
4 讨论 | 第56-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-62页 |
作者简介 | 第62-63页 |
致谢 | 第63页 |