摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-13页 |
第一章 绪论 | 第13-27页 |
·全谷物与人类健康 | 第13-14页 |
·苦荞的研究进展 | 第14-15页 |
·固态发酵对生物活性的影响 | 第15-16页 |
·氧化应激 | 第16-18页 |
·炎症 | 第18-24页 |
·机体炎症反应 | 第18-19页 |
·炎症与慢性病 | 第19-22页 |
·炎症与肥胖 | 第19页 |
·炎症与动脉粥样硬化 | 第19-20页 |
·炎症与胰岛素抵抗 | 第20页 |
·炎症与高血压 | 第20-21页 |
·炎症与癌症 | 第21-22页 |
·天然抗炎药物 | 第22-24页 |
·黄酮类化合物 | 第22-23页 |
·多糖类 | 第23页 |
·皂苷类 | 第23-24页 |
·生物碱 | 第24页 |
·氧化应激与炎症 | 第24-25页 |
·本课题研究的目的、意义及内容 | 第25-27页 |
·研究目的及意义 | 第25页 |
·研究内容 | 第25-27页 |
第二章 固态发酵对苦养中酚类物质的影响 | 第27-39页 |
·实验原料、试剂与仪器设备 | 第27-29页 |
·实验原料 | 第27页 |
·实验试剂及配制 | 第27-28页 |
·仪器设备 | 第28-29页 |
·实验方法 | 第29-32页 |
·制作母曲 | 第29页 |
·固态发酵苦荞 | 第29页 |
·提取物的制备 | 第29-30页 |
·总酚含量测定 | 第30页 |
·总黄酮含量测定 | 第30页 |
·样品中酚类物质的LC-MS联用分析 | 第30-31页 |
·样品中酚类物质的HPLC分析 | 第31页 |
·芦丁和槲皮素混合标准溶液的配制 | 第31页 |
·HPLC色谱条件 | 第31页 |
·样品中芦丁和槲皮素含量的测定方法 | 第31页 |
·数据统计分析 | 第31-32页 |
·实验结果与分析 | 第32-38页 |
·发酵/未发酵苦荞提取率 | 第32页 |
·不同发酵时间对应的苦荞总酚、总黄酮含量的变化 | 第32-34页 |
·样品中酚类物质的LC-MS分析 | 第34-35页 |
·样品中酚类物质的HPLC分析 | 第35-38页 |
·本章小结 | 第38-39页 |
第三章 固态发酵对苦荞抗氧化性的影响 | 第39-59页 |
·实验原料、试剂与仪器 | 第40-41页 |
·实验原料 | 第40页 |
·实验试剂及配制 | 第40-41页 |
·实验仪器 | 第41页 |
·实验方法 | 第41-46页 |
·DPPH~·由基清除能力测定 | 第41-42页 |
·ABTS~(+·)自由基清除能力测定 | 第42页 |
·铁离子还原能力测定 | 第42-43页 |
·对DNA氧化损伤的保护作用 | 第43-46页 |
·大肠杆菌表达载体pET23b的培养 | 第43页 |
·提取质粒DNA | 第43-44页 |
·质粒DNA的纯化 | 第44-45页 |
·样品对质粒DNA氧化损伤的保护作用 | 第45-46页 |
·实验结果与分析 | 第46-58页 |
·DPPH~·自由基清除能力 | 第46-48页 |
·ABTS~(+·)自由基清除能力测定 | 第48-51页 |
·铁离子还原能力测定 | 第51-54页 |
·对DNA氧化损伤的保护作用 | 第54-58页 |
·pET23b质粒DNA的提取和纯化 | 第54页 |
·AAPH浓度的选择 | 第54-55页 |
·样品对质粒DNA超螺旋结构的保护作用 | 第55-58页 |
·本章小结 | 第58-59页 |
第四章 固态发酵苦荞抗炎活性与机理的初步研究 | 第59-79页 |
·实验原料、试剂与仪器 | 第59-61页 |
·实验原料 | 第59页 |
·实验试剂及耗材 | 第59-60页 |
·实验仪器 | 第60-61页 |
·实验方法 | 第61-68页 |
·细胞的复苏及培养 | 第61-62页 |
·建立细胞炎症模型 | 第62-64页 |
·不同浓度样品对LPS诱导的RAW264.7细胞活性的影响 | 第64页 |
·各样品对LPS诱导的RAW264.7细胞释放NO的影响 | 第64-65页 |
·各样品对LPS诱导的RAW264.7细胞iNOS转录的影响 | 第65-68页 |
·细胞的培养 | 第65页 |
·总RNA的提取 | 第65-66页 |
·反转录合成cDNA | 第66-67页 |
·反转录产物cDNA的PCR扩增 | 第67-68页 |
·基因相对转录量的计算方法及数据的统计分析 | 第68页 |
·实验结果与分析 | 第68-77页 |
·建立细胞炎症模型 | 第68-70页 |
·不同浓度样品对LPS诱导的RAW264.7细胞活性的影响 | 第70-71页 |
·不同浓度样品对LPS诱导的RAW264.7细胞释放NO的影响 | 第71-73页 |
·RNA纯度分析 | 第73-74页 |
·琼脂糖凝胶电泳分析 | 第73-74页 |
·吸光度分析 | 第74页 |
·RT-PCR产物溶解曲线图 | 第74-75页 |
·不同样品实验组中iNOS mRNA的扩增曲线 | 第75-76页 |
·不同样品实验组中iNOS mRNA的相对转录量 | 第76-77页 |
·本章小结 | 第77-79页 |
第五章 纯化对苦荞中酚类物质、抗氧化性的影响 | 第79-85页 |
·实验原料、试剂及仪器 | 第79页 |
·实验方法 | 第79-80页 |
·半制备液相纯化发酵前后苦荞提取物 | 第79-80页 |
·纯化前后发酵与未发酵苦荞提取物的总酚、总黄酮含量的测定 | 第80页 |
·测定纯化前后发酵与未发酵苦荞提取物的抗氧化活性 | 第80页 |
·实验结果与分析 | 第80-84页 |
·半制备液相纯化发酵前后苦荞提取物 | 第80页 |
·纯化前后发酵与未发酵苦荞提取物中总酚、总黄酮含量变化 | 第80-81页 |
·纯化前后发酵与未发酵苦荞提取物抗氧化活性的变化 | 第81-83页 |
·纯化前后发酵与未发酵苦荞提取物中酚类物质的HPLC分析 | 第83-84页 |
·本章小结 | 第84-85页 |
结论 | 第85-87页 |
展望 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-98页 |
致谢 | 第98-99页 |
附录 | 第99页 |