| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第1章 引言 | 第10-24页 |
| 1.1 胡桃醌的概况 | 第10-11页 |
| 1.1.1 胡桃醌简介 | 第10页 |
| 1.1.2 胡桃醌的生物及生理活性 | 第10-11页 |
| 1.1.3 胡桃醌的应用 | 第11页 |
| 1.2 脂质体 | 第11-19页 |
| 1.2.1 脂质体定义及简介 | 第11-12页 |
| 1.2.3 脂质体结构和特性 | 第12-14页 |
| 1.2.4 脂质体分类 | 第14-15页 |
| 1.2.5 脂质体制备方法 | 第15-17页 |
| 1.2.6 脂质体包封率测定 | 第17-18页 |
| 1.2.7 脂质体的应用 | 第18-19页 |
| 1.2.8 脂质体在实际应用中存在的问题 | 第19页 |
| 1.3 温度敏感型脂质体 | 第19-22页 |
| 1.3.1 温度敏感脂质体的释放药物原理 | 第19-20页 |
| 1.3.2 温敏脂质体的膜材选择 | 第20-21页 |
| 1.3.3 温敏脂质体类型 | 第21-22页 |
| 1.3.4 温敏脂质体的应用 | 第22页 |
| 1.4 课题来源和研究意义 | 第22页 |
| 1.5 本论文主要工作 | 第22-24页 |
| 第2章 胡桃醌脂质体包封率测定 | 第24-35页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 胡桃醌脂质体的制备 | 第26页 |
| 2.3.2 测定波长的确立 | 第26页 |
| 2.3.3 标准曲线绘制和包封率计算方法 | 第26页 |
| 2.3.4 处理条件 | 第26-27页 |
| 2.3.5 回收率实验 | 第27页 |
| 2.3.6 精密度及重现性实验 | 第27页 |
| 2.3.7 数据统计 | 第27-28页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第28-34页 |
| 2.4.1 最大吸收波长的确定 | 第28-29页 |
| 2.4.2 胡桃醌标准曲线 | 第29页 |
| 2.4.3 破壁条件确定 | 第29-31页 |
| 2.4.4 透析法 | 第31页 |
| 2.4.5 葡聚糖凝胶色谱柱法 | 第31-33页 |
| 2.4.6 回收率 | 第33页 |
| 2.4.7 精密度实验 | 第33-34页 |
| 2.5 结论 | 第34-35页 |
| 第3章 胡桃醌脂质体制备工艺优化 | 第35-48页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第35-36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1 胡桃醌脂质体制备工艺 | 第36-37页 |
| 3.3.2 胡桃醌脂质体制备单因素及响应面实验 | 第37-39页 |
| 3.3.2.1 膜材比对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第37页 |
| 3.3.2.2 脂药比对胡桃醌脂质体包封率影响 | 第37页 |
| 3.3.2.3 注入速度对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第37页 |
| 3.3.2.4 缓冲液PBS温度对脂质体包封率的影响 | 第37页 |
| 3.3.2.5 超声时间对脂质体包封率的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.2.6 响应面法优化制备工艺 | 第38页 |
| 3.3.2.7 包封率的测定 | 第38页 |
| 3.3.2.8 重现性实验 | 第38页 |
| 3.3.2.9 统计学处理 | 第38-39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-47页 |
| 3.4.1 单因素实验 | 第39-43页 |
| 3.4.1.1 卵磷脂与胆固醇质量比（膜材比）对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.1.2 脂质壁材质量与胡桃醌质量比（脂药比）对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.1.3 注入速度对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.1.4 缓冲液PBS温度对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第42页 |
| 3.4.1.5 超声时间对胡桃醌脂质体包封率的影响 | 第42-43页 |
| 3.4.2 响应面实验 | 第43-45页 |
| 3.4.3 响应面工艺优化分析 | 第45-47页 |
| 3.4.4 条件的优化与验证 | 第47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 第4章 胡桃醌温敏脂质体 | 第48-64页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第49-50页 |
| 4.3 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.3.1 胡桃醌常规脂质体和胡桃醌温敏脂质体的制备 | 第50页 |
| 4.3.2 粒径分布和zeta电位测定 | 第50页 |
| 4.3.3 包封率测定 | 第50页 |
| 4.3.4 傅立叶红外(FI-IR) | 第50-51页 |
| 4.3.5 透射电镜（TEM）和原子力显微（AFM） | 第51页 |
| 4.3.6 差示扫描量热仪（DSC） | 第51页 |
| 4.3.7 释放实验 | 第51-52页 |
| 4.3.8 细胞培养 | 第52页 |
| 4.3.9 MTT比色法检测Hep G2细胞增殖抑制率 | 第52页 |
| 4.3.10 数据统计 | 第52页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第52-63页 |
| 4.4.1 制备方法讨论 | 第52-54页 |
| 4.4.2 粒径和zeta电位 | 第54页 |
| 4.4.3 包封率（EE） | 第54页 |
| 4.4.4 傅立叶红外（FT-IR） | 第54-56页 |
| 4.4.5 形态表征 | 第56-57页 |
| 4.4.6 差示扫描量热（DSC）分析 | 第57-59页 |
| 4.4.7 体外释放 | 第59-60页 |
| 4.4.8 细胞存活率和形态 | 第60-63页 |
| 4.5 结论 | 第63-64页 |
| 第5章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 结论 | 第64页 |
| 5.2 展望 | 第64-66页 |
| 部分缩写对照表 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 攻读硕士期间的研究成果 | 第75页 |
