| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-24页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 鼠尾藻化学成分的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 多糖类 | 第14-15页 |
| 1.2.2 多酚类 | 第15页 |
| 1.2.3 异戊二烯类 | 第15页 |
| 1.2.4 岩藻黄质 | 第15-16页 |
| 1.2.5 多不饱和脂肪酸 | 第16页 |
| 1.3 鼠尾藻多糖的生物活性研究 | 第16-18页 |
| 1.3.1 抗氧化活性 | 第16页 |
| 1.3.2 降血糖活性 | 第16-17页 |
| 1.3.3 抗凝血活性 | 第17页 |
| 1.3.4 抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.3.5 抑菌和抗病毒活性 | 第18页 |
| 1.3.6 其他药理作用 | 第18页 |
| 1.4 多糖的消化酵解对肠道功能的影响 | 第18-22页 |
| 1.4.1 多糖对肠道功能的影响 | 第18-20页 |
| 1.4.2 多糖的体外消化酵解研究 | 第20-21页 |
| 1.4.3 肠道菌群对糖尿病的作用 | 第21-22页 |
| 1.5 本课题的研究意义及主要内容 | 第22-24页 |
| 1.5.1 研究背景及意义 | 第22-23页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 优化鼠尾藻粗多糖的微波提取及生物活性比较 | 第24-49页 |
| 2.1 前言 | 第24页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.3 实验仪器与设备 | 第25-26页 |
| 2.4 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.4.1 鼠尾藻原料的预处理 | 第26页 |
| 2.4.2 响应面优化鼠尾藻多糖的微波提取方法 | 第26-27页 |
| 2.4.3 鼠尾藻多糖的传统水提法 | 第27页 |
| 2.4.4 鼠尾藻粗多糖理化性质测定 | 第27-28页 |
| 2.4.5 多糖分子量测定 | 第28-29页 |
| 2.4.6 单糖组成和糖醛酸含量分析 | 第29-30页 |
| 2.4.7 红外光谱分析 | 第30页 |
| 2.4.8 圆二色谱分析 | 第30页 |
| 2.4.9 扫描电镜分析 | 第30页 |
| 2.4.10 对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性 | 第30-31页 |
| 2.4.11 抗氧化活性测定 | 第31页 |
| 2.4.12 数据分析 | 第31-32页 |
| 2.5 实验结果与讨论 | 第32-47页 |
| 2.5.1 鼠尾藻多糖微波提取条件的响应面优化 | 第32-39页 |
| 2.5.2 鼠尾藻多糖的传统水提 | 第39页 |
| 2.5.3 理化性质分析 | 第39-41页 |
| 2.5.4 分子量的分布 | 第41页 |
| 2.5.5 单糖组成分析 | 第41-43页 |
| 2.5.6 红外分析 | 第43-44页 |
| 2.5.7 圆二色谱分析 | 第44-45页 |
| 2.5.8 扫描电镜分析 | 第45页 |
| 2.5.9 对 α-葡萄糖苷酶的抑制作用分析 | 第45-46页 |
| 2.5.10 抗氧化活性分析 | 第46-47页 |
| 2.6 本章小结 | 第47-49页 |
| 第三章 鼠尾藻多糖的分离纯化、结构鉴定及抗氧化和降血糖活性 | 第49-64页 |
| 3.1 前言 | 第49页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第49页 |
| 3.3 实验仪器与设备 | 第49-50页 |
| 3.4 实验方法 | 第50-52页 |
| 3.4.1 鼠尾藻粗多糖的制备 | 第50页 |
| 3.4.2 鼠尾藻多糖的分离纯化 | 第50页 |
| 3.4.3 理化性质分析 | 第50-51页 |
| 3.4.4 分子量测定 | 第51页 |
| 3.4.5 单糖和糖醛酸组成与含量测定 | 第51页 |
| 3.4.6 红外光谱测定 | 第51页 |
| 3.4.7 三股螺旋结构测定 | 第51页 |
| 3.4.8 原子力显微镜测定 | 第51页 |
| 3.4.9 高碘酸氧化 | 第51-52页 |
| 3.4.10 α-葡萄糖苷酶的抑制活性 | 第52页 |
| 3.4.11 抗氧化活性分析 | 第52页 |
| 3.4.12 数据分析 | 第52页 |
| 3.5 实验结果与讨论 | 第52-62页 |
| 3.5.1 鼠尾藻多糖的分离纯化 | 第52-53页 |
| 3.5.2 理化性质 | 第53-54页 |
| 3.5.3 分子量 | 第54-55页 |
| 3.5.4 单糖和糖醛酸组成与含量 | 第55-56页 |
| 3.5.5 红外光谱 | 第56-58页 |
| 3.5.6 三股螺旋结构 | 第58页 |
| 3.5.7 原子力显微镜测定 | 第58-59页 |
| 3.5.8 高碘酸氧化 | 第59-60页 |
| 3.5.9 对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性分析 | 第60-61页 |
| 3.5.10 抗氧化活性分析 | 第61-62页 |
| 3.6 本章小结 | 第62-64页 |
| 第四章 鼠尾藻多糖在人体模拟胃肠道系统的消化特征 | 第64-73页 |
| 4.1 前言 | 第64页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第64-65页 |
| 4.3 实验仪器与设备 | 第65页 |
| 4.4 实验方法 | 第65-67页 |
| 4.4.1 鼠尾藻多糖的制备 | 第65页 |
| 4.4.2 体外消化液的配置 | 第65页 |
| 4.4.3 鼠尾藻多糖在模拟人体胃肠道中的消化 | 第65-66页 |
| 4.4.4 多糖消化产物分子量的测定 | 第66页 |
| 4.4.5 消化产物还原糖浓度的测定 | 第66页 |
| 4.4.6 消化产物中游离单糖测定 | 第66-67页 |
| 4.4.7 数据分析 | 第67页 |
| 4.5 实验结果与讨论 | 第67-72页 |
| 4.5.1 消化产物分子量的变化 | 第67-69页 |
| 4.5.2 消化液中还原糖含量的变化 | 第69-71页 |
| 4.5.3 消化液中的游离单糖的测定 | 第71-72页 |
| 4.6 本章小结 | 第72-73页 |
| 第五章 鼠尾藻多糖酵解代谢特征 | 第73-87页 |
| 5.1 前言 | 第73页 |
| 5.2 实验材料与试剂 | 第73-74页 |
| 5.3 实验仪器与设备 | 第74页 |
| 5.4 实验方法 | 第74-77页 |
| 5.4.1 鼠尾藻多糖的制备 | 第74-75页 |
| 5.4.2 配置发酵培养基 | 第75页 |
| 5.4.3 制备人体肠道菌群 | 第75页 |
| 5.4.4 体外发酵鼠尾藻多糖 | 第75-76页 |
| 5.4.5 测定酵解产物的pH值 | 第76页 |
| 5.4.6 检测总糖和还原糖含量 | 第76页 |
| 5.4.7 测定酵解产物中单糖含量 | 第76页 |
| 5.4.8 测定酵解产物中SCFA含量 | 第76-77页 |
| 5.4.9 DNA提取和焦磷酸测序 | 第77页 |
| 5.4.10 数据分析 | 第77页 |
| 5.5 实验结果与讨论 | 第77-86页 |
| 5.5.1 酵解产物中pH的变化 | 第77-78页 |
| 5.5.2 酵解液中总糖和还原糖浓度的变化 | 第78-79页 |
| 5.5.3 酵解产物的单糖组成及含量 | 第79页 |
| 5.5.4 酵解产物中SCFA的含量 | 第79-83页 |
| 5.5.5 ST-P2发酵对人体肠道菌群的影响 | 第83-86页 |
| 5.6 本章小结 | 第86-87页 |
| 结论与展望 | 第87-90页 |
| 1、结论 | 第87-89页 |
| 2、创新点 | 第89页 |
| 3、展望 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-100页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第100-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 附件 | 第103页 |