| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 主要缩略词说明 | 第12-14页 |
| 1 绪论 | 第14-22页 |
| 1.1 马尾藻简介 | 第14页 |
| 1.2 岩藻聚糖的生物活性及对血脂的影响 | 第14-16页 |
| 1.2.1 岩藻聚糖的生物活性 | 第14-16页 |
| 1.2.2 岩藻聚糖对血脂的影响 | 第16页 |
| 1.3 高胆固醇血症 | 第16-20页 |
| 1.3.1 高胆固醇血症概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 胆固醇简介 | 第17-18页 |
| 1.3.3 胆固醇代谢途径 | 第18-19页 |
| 1.3.4 与胆固醇代谢相关基因 | 第19-20页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第20-22页 |
| 1.4.1 研究的目的与意义 | 第20-21页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 2 不同来源马尾藻粗多糖降胆固醇活性比较 | 第22-37页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 粗多糖提取[77] | 第23页 |
| 2.2.2 粗多糖化学成分分析 | 第23-24页 |
| 2.2.3 胆固醇胶束溶液实验 | 第24-25页 |
| 2.2.4 胆酸盐结合实验 | 第25页 |
| 2.2.5 对HepG2细胞内总胆固醇水平的影响 | 第25-28页 |
| 2.2.6 统计分析 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-35页 |
| 2.3.1 粗多糖化学组成分析 | 第28页 |
| 2.3.2 不同马尾藻粗多糖对胆固醇溶解度的抑制率 | 第28-29页 |
| 2.3.3 胆酸盐标准曲线 | 第29-30页 |
| 2.3.4 不同马尾藻粗多糖胆酸盐结合率 | 第30页 |
| 2.3.5 HepG2细胞铺板数量的确定 | 第30-31页 |
| 2.3.6 不同粗多糖对HepG2细胞活力的影响 | 第31-34页 |
| 2.3.7 不同粗多糖对HepG2细胞内总胆固醇水平的影响 | 第34-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-36页 |
| 2.5 小结 | 第36-37页 |
| 3 不同级分张氏马尾藻岩藻聚糖的制备与组成分析 | 第37-46页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第37页 |
| 3.1.1 材料 | 第37页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第37页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 张氏马尾藻的基本成分分析[85-88] | 第37-38页 |
| 3.2.2 不同级分张氏马尾藻岩藻聚糖的分离纯化 | 第38页 |
| 3.2.3 多糖含量的测定 | 第38页 |
| 3.2.4 总糖含量的测定 | 第38页 |
| 3.2.5 岩藻糖含量的测定 | 第38页 |
| 3.2.6 硫酸基含量的测定 | 第38-39页 |
| 3.2.7 不同级分岩藻聚糖的单糖组成分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-45页 |
| 3.3.1 张氏马尾藻的基本组成成分 | 第39-40页 |
| 3.3.2 张氏马尾藻的氨基酸构成及营养评价 | 第40-41页 |
| 3.3.3 无机元素组成 | 第41-42页 |
| 3.3.4 DEAE-52柱层析与化学组成分析 | 第42页 |
| 3.3.5 岩藻聚糖的单糖组成 | 第42-45页 |
| 3.4 讨论 | 第45页 |
| 3.5 小结 | 第45-46页 |
| 4 不同级分张氏马尾藻岩藻聚糖对HepG2细胞的降胆固醇作用 | 第46-60页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第46-47页 |
| 4.1.1 材料 | 第46页 |
| 4.1.2 实验细胞 | 第46页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第46页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第46-47页 |
| 4.2 实验方法 | 第47-48页 |
| 4.2.1 细胞复苏、培养、传代、冻存 | 第47页 |
| 4.2.2 不同级分岩藻聚糖对HepG2细胞增殖活性的测定（MTT法） | 第47页 |
| 4.2.3 不同级分岩藻聚糖降胆固醇作用 | 第47页 |
| 4.2.4 ZF2降胆固醇作用的时间和浓度效应 | 第47-48页 |
| 4.2.5 培养基中总胆固醇和胆汁酸的测定 | 第48页 |
| 4.2.6 细胞内总胆固醇的测定 | 第48页 |
| 4.2.7 细胞内总蛋白含量的测定 | 第48页 |
| 4.2.8 ELISA法测定培养基中ApoB、ApoA1的分泌 | 第48页 |
| 4.2.9 统计分析 | 第48页 |
| 4.3 结果与分析 | 第48-58页 |
| 4.3.1 不同级分ZF对HepG2细胞活力的影响 | 第48-51页 |
| 4.3.2 不同级分ZF对细胞内总胆固醇水平的影响 | 第51-53页 |
| 4.3.3 ZF2对细胞内总胆固醇水平的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 ZF2对培养基中总胆汁酸和总胆固醇水平的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.5 ZF2对Hep G2细胞ApoA1、ApoB分泌的影响 | 第55-58页 |
| 4.4 讨论 | 第58-59页 |
| 4.5 小结 | 第59-60页 |
| 5 不同级分张氏马尾藻岩藻聚糖降胆固醇机理初探 | 第60-70页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第60页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第60页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-63页 |
| 5.2.1 细胞的复苏、培养与传代 | 第60页 |
| 5.2.2 ZF2对SREBP-2、HMGCR、LDLR、LXR-α、ABCA1、CYP7A1mRNA的调控作用 | 第60页 |
| 5.2.3 细胞中总RNA的提取 | 第60-61页 |
| 5.2.4 RNA纯度与浓度的测定 | 第61页 |
| 5.2.5 RNA溶液完整性的测定 | 第61页 |
| 5.2.6 cDNA的合成 | 第61-62页 |
| 5.2.7 Real Time PCR | 第62-63页 |
| 5.2.8 统计分析 | 第63页 |
| 5.3 结果与分析 | 第63-68页 |
| 5.3.1 细胞总RNA纯度测定 | 第63页 |
| 5.3.2 细胞总RNA完整性测定 | 第63-64页 |
| 5.3.3 ZF2对Hep G2细胞SREBP-2 mRNA相对表达量的影响 | 第64-65页 |
| 5.3.4 ZF2对Hep G2细胞LDLR mRNA相对表达量的影响 | 第65页 |
| 5.3.5 ZF2对Hep G2细胞HMGCR mRNA相对表达量的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.6 ZF2对Hep G2细胞CYP7A1 mRNA相对表达量的影响 | 第66-67页 |
| 5.3.7 ZF2对Hep G2细胞LXR-α mRNA相对表达量的影响 | 第67页 |
| 5.3.8 ZF2对Hep G2细胞ABCA1 mRNA相对表达量的影响 | 第67-68页 |
| 5.4 讨论 | 第68-69页 |
| 5.5 小结 | 第69-70页 |
| 6 结论 | 第70-72页 |
| 6.1 本文的主要结论 | 第70-71页 |
| 6.2 创新点 | 第71页 |
| 6.3 本研究存在的问题及展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80-81页 |
| 导师简介 | 第81页 |
