| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 多糖的研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1.1 多糖及其理化特性 | 第12-13页 |
| 1.1.2 多糖的提取纯化 | 第13-14页 |
| 1.1.3 多糖的结构解析 | 第14-15页 |
| 1.1.4 多糖的抗氧化活性 | 第15-16页 |
| 1.1.5 多糖的免疫调节活性 | 第16-18页 |
| 1.2 黑木耳多糖概述 | 第18-19页 |
| 1.2.1 黑木耳研究概述 | 第18页 |
| 1.2.2 黑木耳多糖研究概述 | 第18-19页 |
| 1.3 本课题研究意义及内容 | 第19-22页 |
| 1.3.1 课题研究意义 | 第19页 |
| 1.3.2 课题研究内容 | 第19-22页 |
| 第2章 黑木耳多糖提取纯化工艺 | 第22-34页 |
| 2.1 本章引言 | 第22页 |
| 2.2 实验试剂及仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 实验仪器及设备 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1 高温蒸汽浸提法 | 第23-24页 |
| 2.3.2 超滤法 | 第24-26页 |
| 2.3.3 统计学方法 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-33页 |
| 2.4.1 不同孔径超滤膜膜参数测定 | 第26-27页 |
| 2.4.2 黑木耳多糖超滤分级分离情况 | 第27-28页 |
| 2.4.3 不同压力对超滤法分离提纯效果的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.4 不同温度对超滤法分离提纯效果的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.5 不同料液浓度对超滤法分离提纯效果的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.6 超滤多糖组成测定 | 第31-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 第3章 黑木耳多糖结构特性研究 | 第34-45页 |
| 3.1 本章引言 | 第34页 |
| 3.2 实验试剂及仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.2 实验仪器及设备 | 第35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 分子量测定 | 第35-36页 |
| 3.3.2 单糖组成测定 | 第36页 |
| 3.3.3 红外光谱法 | 第36页 |
| 3.3.4 高碘酸氧化 | 第36页 |
| 3.3.5 刚果红实验 | 第36页 |
| 3.3.6 原子力显微镜分析 | 第36页 |
| 3.3.7 扫描电子显微镜分析 | 第36-37页 |
| 3.3.8 统计学方法 | 第37页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第37-43页 |
| 3.4.1 分子量测定 | 第37页 |
| 3.4.2 单糖组成测定 | 第37-39页 |
| 3.4.3 红外光谱分析 | 第39页 |
| 3.4.4 高碘酸氧化 | 第39-41页 |
| 3.4.5 刚果红实验 | 第41页 |
| 3.4.6 原子力显微镜分析 | 第41-42页 |
| 3.4.7 扫描电子显微镜分析 | 第42-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第4章 黑木耳多糖体外抗氧化活性 | 第45-50页 |
| 4.1 本章引言 | 第45页 |
| 4.2 实验试剂及仪器 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第45页 |
| 4.2.2 实验仪器及设备 | 第45-46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.3.1 总还原力测定 | 第46页 |
| 4.3.2 ABTS~+·自由基清除能力测定 | 第46页 |
| 4.3.3 DPPH自由基清除能力测定 | 第46-47页 |
| 4.3.4 统计学方法 | 第47页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第47-49页 |
| 4.4.1 总还原力 | 第47-48页 |
| 4.4.2 ABTS~+·自由基清除能力 | 第48页 |
| 4.4.3 DPPH自由基清除能力 | 第48-49页 |
| 4.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第5章 黑木耳多糖体外免疫调节活性 | 第50-59页 |
| 5.1 本章引言 | 第50页 |
| 5.2 实验试剂及仪器 | 第50-51页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第50-51页 |
| 5.2.2 实验仪器及设备 | 第51页 |
| 5.3 实验方法 | 第51-52页 |
| 5.3.1 RAW264.7细胞培养 | 第51页 |
| 5.3.2 细胞增殖活力测定 | 第51-52页 |
| 5.3.3 细胞吞噬测定 | 第52页 |
| 5.3.4 细胞形态学观察 | 第52页 |
| 5.3.5 NO释放量测定 | 第52页 |
| 5.3.6 细胞因子含量测定 | 第52页 |
| 5.3.7 统计学方法 | 第52页 |
| 5.4 结果及讨论 | 第52-57页 |
| 5.4.1 黑木耳多糖对RAW264.7细胞增殖的影响 | 第52-53页 |
| 5.4.2 黑木耳多糖对RAW264.7细胞吞噬作用的影响 | 第53-54页 |
| 5.4.3 黑木耳多糖对RAW264.7细胞形态影响 | 第54-55页 |
| 5.4.4 黑木耳多糖对RAW264.7细胞释放NO的影响 | 第55-56页 |
| 5.4.5 黑木耳多糖对RAW264.7细胞分泌细胞因子的影响 | 第56-57页 |
| 5.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 第6章 黑木耳多糖对环磷酰胺诱导的免疫低下小鼠的调节作用 | 第59-66页 |
| 6.1 本章引言 | 第59页 |
| 6.2 实验试剂及仪器 | 第59-60页 |
| 6.2.1 实验材料与试剂 | 第59-60页 |
| 6.2.2 实验仪器及设备 | 第60页 |
| 6.3 实验方法 | 第60-62页 |
| 6.3.1 免疫低下小鼠模型的建立 | 第60-61页 |
| 6.3.2 小鼠体重变化及外周血细胞测定 | 第61页 |
| 6.3.3 小鼠免疫器官指数测定 | 第61页 |
| 6.3.4 小鼠脾细胞提取 | 第61页 |
| 6.3.5 小鼠脾细胞增殖活性测定 | 第61-62页 |
| 6.3.6 统计学方法 | 第62页 |
| 6.4 结果及讨论 | 第62-65页 |
| 6.4.1 黑木耳多糖对小鼠体重的影响 | 第62页 |
| 6.4.2 黑木耳多糖对小鼠白细胞含量的的影响 | 第62-63页 |
| 6.4.3 黑木耳多糖对脾脏和胸腺指数的影响 | 第63-64页 |
| 6.4.4 黑木耳多糖对环磷酰胺介导的小鼠脾细胞增殖影响 | 第64-65页 |
| 6.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第7章 总结与展望 | 第66-69页 |
| 7.1 课题总结 | 第66-67页 |
| 7.2 课题创新点 | 第67-68页 |
| 7.3 课题展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 论文发表情况 | 第78页 |
