| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 植物多糖的研究概况 | 第13-19页 |
| 1.2.1 植物多糖的提取 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物多糖的分离 | 第15-16页 |
| 1.2.3 植物多糖的纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.4 植物多糖的纯度鉴定 | 第17页 |
| 1.2.5 植物多糖的结构性质 | 第17-18页 |
| 1.2.6 植物多糖的生物活性 | 第18-19页 |
| 1.3 绞股蓝茶的研究概况 | 第19页 |
| 1.4 本课题的研究意义和研究内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20页 |
| 1.4.3 创新点 | 第20-21页 |
| 第2章 绞股蓝茶多糖的提取及分离纯化 | 第21-31页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-25页 |
| 2.3.1 绞股蓝茶多糖的提取 | 第22-23页 |
| 2.3.2 多糖得率测定 | 第23页 |
| 2.3.3 GTP总糖含量测定 | 第23页 |
| 2.3.4 GTP的分离纯化 | 第23-25页 |
| 2.3.5 GTPP组分的纯度鉴定 | 第25页 |
| 2.3.6 数据处理与统计分析 | 第25页 |
| 2.4 结果与分析 | 第25-29页 |
| 2.4.1 绞股蓝茶粗多糖的提取 | 第25页 |
| 2.4.2 总糖含量测定 | 第25-26页 |
| 2.4.3 DEAE-52纤维素柱层析纯化结果 | 第26-27页 |
| 2.4.4 G-150葡聚糖凝胶柱层析结果 | 第27-28页 |
| 2.4.5 GTPP的纯度检验 | 第28-29页 |
| 2.5 本章小结 | 第29-31页 |
| 第3章 绞股蓝茶多糖的结构初探和其抗氧化活性的研究 | 第31-51页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第31页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第32页 |
| 3.3 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.3.1 GTPP组分的理化性质 | 第32-33页 |
| 3.3.2 GTPP组分初级结构分析 | 第33-35页 |
| 3.3.3 GTPP组分的抗氧化活性分析 | 第35-36页 |
| 3.3.4 数据处理与统计分析 | 第36页 |
| 3.4 结果与分析 | 第36-44页 |
| 3.4.1 GTPP组分的理化性质结果 | 第36-38页 |
| 3.4.2 GTPP组分的初级结构分析结果 | 第38-44页 |
| 3.5 GTPP组分的抗氧化活性的分析 | 第44-48页 |
| 3.5.1 总还原力的分析 | 第44-45页 |
| 3.5.2 对DPPH·清除能力的差异分析 | 第45-46页 |
| 3.5.3 对ABTS~+清除能力的差异分析 | 第46页 |
| 3.5.4 总抗氧化能力差异分析 | 第46-48页 |
| 3.6 本章小结 | 第48-51页 |
| 第4章 绞股蓝茶多糖对RAW264.7细胞免疫调节作用研究 | 第51-71页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第51-53页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第51页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第51-53页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-59页 |
| 4.3.1 主要试剂配制 | 第53-55页 |
| 4.3.2 RAW264.7细胞的培养 | 第55页 |
| 4.3.3 RAW264.7细胞形态学观察 | 第55-56页 |
| 4.3.4 GTPP组分多糖对RAW264.7细胞增殖的影响 | 第56页 |
| 4.3.5 GTPP组分多糖对RAW264.7细胞吞噬作用的影响 | 第56页 |
| 4.3.6 GTPP组分多糖对RAW264.7细胞分泌NO和细胞因子的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.7 GTPP组分多糖内毒素(LPS)污染的检测 | 第57页 |
| 4.3.8 RAW264.7细胞识别GIPP-3受体的研究 | 第57页 |
| 4.3.9 免疫印迹分析 | 第57-58页 |
| 4.3.10 免疫荧光检验法检测GTPP-3对NF-κBP65核转位的延续 | 第58-59页 |
| 4.3.11 数据处理与统计分析 | 第59页 |
| 4.4 结果与分析 | 第59-69页 |
| 4.4.1 GTPP组分中内毒素(LPS)的检测结果 | 第59-60页 |
| 4.4.2 GTPP组分对RAW264.7细胞形态的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.3 GTPP组分对RAW264.7细胞增殖的影响 | 第61页 |
| 4.4.4 GTPP组分对RAW264.7细胞吞噬活性的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.5 GTPP组分对RAW264.7细胞分泌NO和细胞因子的影响 | 第62-65页 |
| 4.4.6 TLR4抗体对GTPP-3诱导的RAW264.7细胞分泌NO和TNF-α的影响 | 第65页 |
| 4.4.7 GTPP-3对MAPKs通路的影响 | 第65-66页 |
| 4.4.8 GTPP-3对PI3K/Akt通路的影响 | 第66-67页 |
| 4.4.9 GTPP-3对NF-kB通路的影响 | 第67-68页 |
| 4.4.10 MAPKs、PI3K/Akt和NF-kB信号通路抑制剂对GTPP-3促进RAW264.7细胞分泌NO和TNF-α的影响 | 第68-69页 |
| 4.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 第5章 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第85页 |
