| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 萌发对植物籽粒营养成分及功能活性的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.1 萌发对植物籽粒营养成分的研究 | 第10页 |
| 1.1.2 萌发对植物籽粒功能活性的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.2 荞麦的萌发 | 第11-15页 |
| 1.2.1 荞麦概述 | 第11页 |
| 1.2.2 萌发对荞麦营养物质的影响 | 第11-12页 |
| 1.2.3 荞麦芽的营养成分 | 第12-13页 |
| 1.2.4 荞麦芽的生物活性 | 第13-14页 |
| 1.2.5 国内外关于荞麦芽的主要研究方向 | 第14-15页 |
| 1.3 氧化损伤及氧化损伤的保护 | 第15-16页 |
| 1.3.1 氧化损伤 | 第15-16页 |
| 1.3.2 氧化损伤的保护 | 第16页 |
| 1.4 多酚类化合物及其在氧化损伤中的保护作用 | 第16-17页 |
| 1.4.1 多酚类化合物概述 | 第16页 |
| 1.4.2 多酚类物质在氧化损伤中的保护作用 | 第16-17页 |
| 1.5 研究内容、目的及意义 | 第17-18页 |
| 第2章 发芽过程中荞麦芽不同组织部位酚酸化合物、抗氧化活性及PAL酶表达量的变化 | 第18-34页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第19页 |
| 2.1.2 试验所需试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试验所需仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 试验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 荞麦芽的制备 | 第20页 |
| 2.2.2 不同发芽时间荞麦芽的不同组织部位形态学指标的测定 | 第20页 |
| 2.2.3 多酚的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.4 总酚含量的测定 | 第21页 |
| 2.2.5 总黄酮含量测定 | 第21页 |
| 2.2.6 抗氧化活性测定 | 第21页 |
| 2.2.7 酚酸成分及含量分析 | 第21-22页 |
| 2.2.8 PAL基因表达量的测定 | 第22页 |
| 2.2.9 数据统计分析 | 第22页 |
| 2.3 结果与分析 | 第22-31页 |
| 2.3.1 荞麦发芽过程中形态学的变化 | 第22-23页 |
| 2.3.2 荞麦发芽过程中不同发芽时间荞麦芽不同组织部位的重量和长度变化 | 第23-25页 |
| 2.3.3 荞麦发芽过程中不同组织部位总酚含量的变化 | 第25页 |
| 2.3.4 荞麦发芽过程中不同组织部位总黄酮含量的变化 | 第25-26页 |
| 2.3.5 荞麦发芽过程中不同器官抗氧化活性的变化 | 第26-27页 |
| 2.3.6 荞麦发芽过程中酚酸的变化 | 第27-29页 |
| 2.3.7 荞麦发芽过程中PAL基因表达量的变化 | 第29-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-34页 |
| 第3章 荞麦芽乙醇提取物对HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第34-50页 |
| 3.1 试验材料与仪器设备 | 第34-37页 |
| 3.1.1 试验原料 | 第34页 |
| 3.1.2 试验所需试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.3 试验所需仪器与设备 | 第35-36页 |
| 3.1.4 试验主要试剂的配制 | 第36-37页 |
| 3.2 试验方法 | 第37-42页 |
| 3.2.1 荞麦芽的制备 | 第37页 |
| 3.2.2 荞麦芽乙醇提取物溶液中各种酚酸组分的分析 | 第37页 |
| 3.2.3 细胞培养 | 第37-38页 |
| 3.2.4 荞麦芽乙醇提取物对HepG2细胞活力的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.5 HepG2细胞氧化损伤模型的建立—过氧化氢作用浓度的筛选 | 第39页 |
| 3.2.6 荞麦芽乙醇提取物对HepG2细胞的氧化损伤的保护作用 | 第39-40页 |
| 3.2.7 荞麦芽乙醇提取物对氧化损伤HepG2细胞形态的影响 | 第40页 |
| 3.2.8 荞麦芽乙醇提取物对氧化损伤HepG2细胞的保护机制 | 第40-42页 |
| 3.2.9 数据统计分析 | 第42页 |
| 3.3 试验结果 | 第42-49页 |
| 3.3.1 荞麦芽乙醇提取物酚酸成分的定性分析 | 第42-43页 |
| 3.3.2 荞麦芽乙醇提取物对HepG2细胞活力的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 过氧化氢对HepG2细胞氧化损伤作用浓度的确定 | 第44-45页 |
| 3.3.4 荞麦芽乙醇提取物对H2O2诱导的HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第45页 |
| 3.3.5 荞麦芽乙醇提取物对氧化损伤HepG2细胞形态的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.6 荞麦芽乙醇提取物对氧化损伤HepG2细胞的保护机制 | 第46-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 绿原酸对HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第50-58页 |
| 4.1 试验试剂与仪器设备 | 第50页 |
| 4.1.1 试验试剂 | 第50页 |
| 4.1.2 试验所需仪器设备 | 第50页 |
| 4.2 试验方法 | 第50-51页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第50-51页 |
| 4.2.2 绿原酸对HepG2细胞活力的影响 | 第51页 |
| 4.2.3 HepG2细胞氧化损伤模型的建立—过氧化氢作用浓度的筛选 | 第51页 |
| 4.2.4 绿原酸对HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第51页 |
| 4.2.5 绿原酸对氧化损伤状态下HepG2细胞的形态的影响 | 第51页 |
| 4.2.6 绿原酸对氧化损伤的HepG2细胞内的保护机制 | 第51页 |
| 4.2.7 数据统计分析 | 第51页 |
| 4.3 试验结果 | 第51-56页 |
| 4.3.1 绿原酸对HepG2细胞活力的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.2 过氧化氢对HepG2细胞氧化损伤作用浓度的确定 | 第52页 |
| 4.3.3 绿原酸对H2O2诱导的HepG2细胞氧化损伤的保护作用 | 第52-53页 |
| 4.3.4 绿原酸对氧化损伤HepG2细胞形态的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.5 绿原酸对氧化损伤HepG2细胞的保护机制 | 第54-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第5章 结论与展望 | 第58-60页 |
| 5.1 主要结论 | 第58页 |
| 5.2 研究展望 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 攻读硕士期间主要的科研成果 | 第72页 |
