| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 黄花菜简介 | 第15页 |
| 1.2 植物多糖的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 植物多糖的生物活性与功能 | 第15页 |
| 1.2.2 植物多糖的提取 | 第15-16页 |
| 1.2.3 植物多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.4 多糖结构分析的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 超声-电场辅助水提取植物多糖的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 超声辅助水提取机理 | 第18-19页 |
| 1.3.2 电场辅助水提取机理 | 第19-20页 |
| 1.3.3 超声协同电场辅助提取的研究现状 | 第20-21页 |
| 1.4 研究意义和内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 超声协同高压静电场对黄花菜粗多糖抗氧化活性的影响 | 第23-35页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 实验仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 原料的预处理 | 第24页 |
| 2.2.2 超声协同电场提取黄花菜多糖的方法 | 第24-25页 |
| 2.2.3 黄花菜多糖提取率测定(硫酸-苯酚法) | 第25-26页 |
| 2.2.4 黄花菜多糖体外抗氧化活性测定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 不同提取方法的黄花菜多糖抗氧化活性的测定 | 第27页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第27-33页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线的制作 | 第27页 |
| 2.3.2 超声协同高压静电场提取对黄花菜粗多糖抗氧化活性的影响 | 第27-32页 |
| 2.3.3 不同提取方法对黄花菜多糖抗氧化活性的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-35页 |
| 第三章 超声协同高压脉冲静电场提取对黄花菜提取液香气组分和残渣结构的影响 | 第35-54页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第35页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第35页 |
| 3.1.2 实验仪器与设备 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.2.1 黄花菜多糖提取方法 | 第35-36页 |
| 3.2.2 SPME、色谱及质谱条件 | 第36页 |
| 3.2.3 扫描电镜观测(SEM) | 第36页 |
| 3.2.4 数据分析 | 第36页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第36-52页 |
| 3.3.1 黄花菜提取液提取前后的香气成分组成 | 第36-46页 |
| 3.3.2 黄花菜提取液中香气成分的比较 | 第46-50页 |
| 3.3.3 扫描电镜观测(SEM) | 第50-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 第四章 超声协同高压静电场提取黄花菜多糖的机理研究 | 第54-69页 |
| 4.1 实验材料与设备 | 第54-55页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第54页 |
| 4.1.2 实验仪器与设备 | 第54-55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-56页 |
| 4.2.1 提取方法 | 第55页 |
| 4.2.2 黄花菜多糖提取率的测定 | 第55页 |
| 4.2.3 反应体系电导率的测定 | 第55页 |
| 4.2.4 反应体系pH值的测定 | 第55页 |
| 4.2.5 反应体系空化产额的测定 | 第55-56页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第56-67页 |
| 4.3.1 超声和高压静电场对黄花菜提取液电导率的影响 | 第56-59页 |
| 4.3.2 超声和高压静电场对黄花菜提取液pH值的影响 | 第59-61页 |
| 4.3.3 超声和高压静电场对黄花菜多糖提取率的影响 | 第61-63页 |
| 4.3.4 高压静电场强化超声空化的作用机制 | 第63-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 第五章 黄花菜多糖的结构表征 | 第69-82页 |
| 5.1 实验材料与试剂 | 第69-70页 |
| 5.1.1 实验材料与试剂 | 第69-70页 |
| 5.1.2 实验设备 | 第70页 |
| 5.2 实验方法 | 第70-72页 |
| 5.2.1 黄花菜多糖的提取和分离纯化 | 第70-71页 |
| 5.2.2 黄花菜精制多糖体外抗氧化活性的测定 | 第71页 |
| 5.2.3 紫外扫描图谱 | 第71页 |
| 5.2.4 黄花菜多糖分子量的测定及纯度鉴定 | 第71页 |
| 5.2.5 红外光谱分析 | 第71页 |
| 5.2.6 单糖组成分析 | 第71-72页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第72-80页 |
| 5.3.1 黄花菜多糖的DEAE-52柱层析结果 | 第72页 |
| 5.3.2 黄花菜精制多糖的Sephadex G-100葡聚糖凝胶柱层析结果 | 第72-73页 |
| 5.3.3 黄花菜多糖的体外抗氧化活性 | 第73-74页 |
| 5.3.4 黄花菜多糖的紫外扫描图谱 | 第74-75页 |
| 5.3.5 黄花菜多糖HCP-Wb、HCP-1a和HCP-3a分子量的测定及纯度 | 第75-77页 |
| 5.3.6 黄花菜多糖HCP-Wb、HCP-1a和HCP-3a的单糖组成分析 | 第77-79页 |
| 5.3.7 黄花菜多糖HCP-Wb、HCP-1a和HCP-3a的红外光谱分析 | 第79-80页 |
| 5.4 本章小结 | 第80-82页 |
| 第六章 结论与展望 | 第82-86页 |
| 6.1 研究结果 | 第82-85页 |
| 6.1.1 超声协同高压静电场提取对黄花菜粗多糖抗氧化活性的影响 | 第82页 |
| 6.1.2 超声协同高压静电场对黄花菜提取液香气成分和提取残渣结构的影响研究 | 第82-83页 |
| 6.1.3 超声协同高压静电场提取黄花菜多糖的机理研究 | 第83-84页 |
| 6.1.4 黄花菜多糖的结构表征研究 | 第84-85页 |
| 6.2 创新点 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第94页 |
