| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-31页 |
| 1.1 食品大分子混合体系的相行为 | 第12-21页 |
| 1.1.1 食品大分子间的相互作用 | 第12-15页 |
| 1.1.2 相分离的种类 | 第15-17页 |
| 1.1.3 相分离的机理 | 第17-19页 |
| 1.1.4 相分离的应用 | 第19-21页 |
| 1.2 食品大分子的构象转变与凝胶 | 第21-24页 |
| 1.2.1 凝胶的概述 | 第21-23页 |
| 1.2.2 构象转变与凝胶的关系 | 第23-24页 |
| 1.3 多糖与蛋白质的概述 | 第24-29页 |
| 1.3.1 多糖的概述 | 第24-25页 |
| 1.3.2 蛋白质的概述 | 第25页 |
| 1.3.3 卡拉胶的概述 | 第25-27页 |
| 1.3.4 明胶的概述 | 第27-28页 |
| 1.3.5 β-乳球蛋白的概述 | 第28-29页 |
| 1.4 本文研究目的与内容 | 第29-31页 |
| 1.4.1 立题背景及意义 | 第29-30页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第30-31页 |
| 第2章 卡拉胶/明胶混合体系复杂相图的建立 | 第31-46页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验材料与仪器设备 | 第31-33页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第32-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.3.1 分子参数的表征 | 第33页 |
| 2.3.2 溶液的制备 | 第33页 |
| 2.3.3 浊度的测定 | 第33页 |
| 2.3.4 Micro DSC实验 | 第33-34页 |
| 2.3.5 流变实验 | 第34页 |
| 2.3.6 相组成的分析 | 第34页 |
| 2.3.7 动态光散射实验 | 第34页 |
| 2.3.8 亚甲基蓝实验 | 第34-35页 |
| 2.3.9 核磁共振（NMR）实验 | 第35页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第35-45页 |
| 2.4.1 离子强度-温度坐标下卡拉胶/明胶混合体系相图的绘制 | 第35-39页 |
| 2.4.2 各相区相分离种类的确定 | 第39-42页 |
| 2.4.3 HBIAPS的机理 | 第42-45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-46页 |
| 第3章 卡拉胶构象转变对静电复合的影响 | 第46-60页 |
| 3.1 引言 | 第46页 |
| 3.2 实验材料与仪器设备 | 第46-47页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第46-47页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第47页 |
| 3.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.3.1 溶液的制备 | 第47页 |
| 3.3.2 浊度的测定 | 第47-48页 |
| 3.3.3 Micro DSC实验 | 第48页 |
| 3.3.4 电导率实验 | 第48页 |
| 3.3.5 荧光实验 | 第48页 |
| 3.3.6 激光共聚焦（CLSM）实验 | 第48-49页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第49-58页 |
| 3.4.1 KCl存在下卡拉胶/明胶静电复合在降温过程中的变化 | 第49-51页 |
| 3.4.2 Me_4NI存在下卡拉胶/明胶静电复合在降温过程中的变化 | 第51-53页 |
| 3.4.3 KCl和Me_4NI浓度的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.4 卡拉胶构象转变影响卡拉胶/明胶静电复合的机理 | 第54-58页 |
| 3.4.4.1 离子络合 | 第55页 |
| 3.4.4.2 分子结构硬化 | 第55-56页 |
| 3.4.4.3 机理示意图及意义 | 第56-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58页 |
| 本章附录 双螺旋形成理论 | 第58-60页 |
| 第4章 静电复合对卡拉胶构象转变的影响 | 第60-75页 |
| 4.1 引言 | 第60页 |
| 4.2 实验材料与仪器设备 | 第60-61页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第60-61页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-63页 |
| 4.3.1 不同分子量 β-乳球蛋白水解产物的制备与表征 | 第61-62页 |
| 4.3.2 溶液的制备 | 第62页 |
| 4.3.3 Micro DSC实验 | 第62页 |
| 4.3.4 浊度的测定 | 第62页 |
| 4.3.5 等温滴定量热（ITC）实验 | 第62-63页 |
| 4.3.6 流变实验 | 第63页 |
| 4.3.7 全反射傅里叶红外光谱（ATR-FTIR）实验 | 第63页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第63-73页 |
| 4.4.1 卡拉胶/β-乳球蛋白静电复合对卡拉胶构象转变的影响 | 第63-65页 |
| 4.4.2 多糖/蛋白质静电复合影响多糖构象转变的机理 | 第65-68页 |
| 4.4.3 蛋白质分子量的影响 | 第68-70页 |
| 4.4.4 静电复合对蛋白质结构的影响 | 第70-73页 |
| 4.5 本章小结 | 第73页 |
| 本章附录 多糖/蛋白质静电复合影响多糖构象转变的理论模型 | 第73-75页 |
| 第5章 卡拉胶离子络合特性的研究 | 第75-88页 |
| 5.1 引言 | 第75页 |
| 5.2 实验材料与仪器设备 | 第75-76页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第75-76页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第76页 |
| 5.3 实验方法 | 第76-78页 |
| 5.3.1 分子参数的表征 | 第76-77页 |
| 5.3.2 溶液的制备 | 第77页 |
| 5.3.3 浊度的测定 | 第77页 |
| 5.3.4 ITC实验 | 第77页 |
| 5.3.5 核磁共振（NMR）实验 | 第77-78页 |
| 5.3.6 X射线光电子能量谱（XPS）实验 | 第78页 |
| 5.3.7 傅里叶红外光谱（FTIR）实验 | 第78页 |
| 5.3.8 X射线衍射（XRD）实验 | 第78页 |
| 5.3.9 元素分析实验 | 第78页 |
| 5.4 实验结果与分析 | 第78-87页 |
| 5.4.1 特异性结合的宏观体现 | 第78-80页 |
| 5.4.2 多手段表征金属离子与 λ-卡拉胶的特异性结合 | 第80-86页 |
| 5.4.2.1 ITC结果 | 第81-83页 |
| 5.4.2.2 NMR结果 | 第83-84页 |
| 5.4.2.3 XPS结果 | 第84-85页 |
| 5.4.2.4 FTIR结果 | 第85页 |
| 5.4.2.5 XRD结果 | 第85-86页 |
| 5.4.3 Fe~(3+)、Al~(3+)与 λ-卡拉胶特异性结合的机理 | 第86-87页 |
| 5.5 本章小结 | 第87-88页 |
| 第6章 结论与展望 | 第88-90页 |
| 6.1 结论 | 第88-89页 |
| 6.2 创新点 | 第89页 |
| 6.3 展望 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 附录 攻读硕士期间研究成果 | 第97页 |
