| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 主要符号表 | 第12-14页 |
| 第1 章食源性活性肽及核桃和米糠活性肽的研究进展 | 第14-28页 |
| 1.1 蛋白的提取方法 | 第14-15页 |
| 1.1.1 碱提酸沉法 | 第14页 |
| 1.1.2 有机溶剂法 | 第14-15页 |
| 1.1.3 水酶法 | 第15页 |
| 1.1.4 仪器辅助提取法 | 第15页 |
| 1.1.4.1 超声波辅助提取法 | 第15页 |
| 1.1.4.2 微波辅助提取法 | 第15页 |
| 1.1.4.3 其他辅助提取法 | 第15页 |
| 1.2 活性肽的提取方法 | 第15-18页 |
| 1.2.1 直接提取法 | 第16页 |
| 1.2.2 微生物发酵法 | 第16页 |
| 1.2.3 酶解法 | 第16-18页 |
| 1.2.3.1 自由酶水解法 | 第16页 |
| 1.2.3.2 固定化酶水解法 | 第16-18页 |
| 1.2.3.2.1 酶固定化的方法 | 第17页 |
| 1.2.3.2.2 酶固定化的载体 | 第17-18页 |
| 1.3 活性肽的分离纯化 | 第18-19页 |
| 1.3.1 凝胶过滤色谱法 | 第18页 |
| 1.3.2 反相高效液相色谱法 | 第18页 |
| 1.3.3 其他分离方法 | 第18-19页 |
| 1.4 活性肽的分类与功能 | 第19-21页 |
| 1.4.1 抗氧化肽的研究 | 第19页 |
| 1.4.2 抑菌肽的研究 | 第19-20页 |
| 1.4.3 降血压肽的研究 | 第20页 |
| 1.4.4 免疫活性肽的研究 | 第20-21页 |
| 1.4.5 其他功能肽的研究 | 第21页 |
| 1.5 核桃的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.5.1 蛋白质 | 第21-22页 |
| 1.5.2 活性肽 | 第22-23页 |
| 1.5.3 油脂 | 第23页 |
| 1.5.4 多糖 | 第23-24页 |
| 1.5.5 其他成分 | 第24页 |
| 1.6 米糠的研究进展 | 第24-26页 |
| 1.6.1 米糠蛋白 | 第24-25页 |
| 1.6.2 米糠活性肽 | 第25页 |
| 1.6.3 开发利用 | 第25-26页 |
| 1.7 课题意义 | 第26-28页 |
| 第2章 核桃蛋白及活性肽的制备与活性研究 | 第28-48页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第28-30页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-36页 |
| 2.3.1 核桃蛋白及核桃肽的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.1.1 核桃蛋白的制备 | 第30页 |
| 2.3.1.2 蛋白含量测定 | 第30页 |
| 2.3.1.3 核桃蛋白提取条件的单因素实验 | 第30页 |
| 2.3.1.4 核桃蛋白提取条件的响应面法优化 | 第30页 |
| 2.3.1.5 核桃肽的制备 | 第30-31页 |
| 2.3.2 水解度对核桃肽抗氧化活性影响的分析测定 | 第31-32页 |
| 2.3.2.1 水解度的测定 | 第31页 |
| 2.3.2.2 抗氧化活性的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.2.3 水解度对核桃肽抗氧化活性影响的测定 | 第32页 |
| 2.3.3 核桃蛋白和核桃肽的活性及功能特性的测定比较 | 第32-33页 |
| 2.3.3.1 抗氧化活性的测定 | 第32页 |
| 2.3.3.2 体外ACE抑制活性的测定 | 第32页 |
| 2.3.3.3 功能特性的测定 | 第32-33页 |
| 2.3.4 核桃肽的稳定性考察 | 第33页 |
| 2.3.5 核桃肽的体内ACE抑制活性的测定 | 第33-34页 |
| 2.3.6 核桃中三种有效成分的综合提取 | 第34-36页 |
| 2.3.6.1 样品前处理 | 第34页 |
| 2.3.6.2 水酶法提取有效成分 | 第34页 |
| 2.3.6.3 活性肽含量测定 | 第34页 |
| 2.3.6.4 多糖含量测定 | 第34-35页 |
| 2.3.6.5 核桃三种有效成分综合提取流程图 | 第35-36页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第36-48页 |
| 2.4.1 核桃蛋白及核桃肽的制备 | 第36-40页 |
| 2.4.1.1 核桃蛋白提取条件的单因素实验 | 第36页 |
| 2.4.1.2 响应面分析法优化核桃蛋白的提取条件 | 第36-39页 |
| 2.4.1.2 核桃肽的制备 | 第39-40页 |
| 2.4.2 水解度对核桃肽抗氧化活性的影响 | 第40页 |
| 2.4.3 核桃蛋白和核桃肽的活性及功能性的测定比较 | 第40-43页 |
| 2.4.3.1 抗氧化活性的测定比较 | 第40-41页 |
| 2.4.3.2 体外ACE抑制活性的测定比较 | 第41页 |
| 2.4.3.3 功能特性的测定比较 | 第41-43页 |
| 2.4.4 核桃肽的稳定性考察 | 第43页 |
| 2.4.5 核桃肽的体内ACE抑制活性的测定 | 第43-44页 |
| 2.4.6 核桃有效成分综合提取 | 第44-48页 |
| 第3章 米糠肽的制备、分离纯化、活性测定及结构鉴定研究 | 第48-60页 |
| 3.1 引言 | 第48页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第48-50页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第48页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第48-49页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第49-50页 |
| 3.3 实验方法 | 第50-52页 |
| 3.3.1 米糠蛋白的制备 | 第50页 |
| 3.3.2 米糠蛋白的含量测定 | 第50页 |
| 3.3.3 米糠酶解物的制备 | 第50页 |
| 3.3.4 抗氧化活性测定 | 第50页 |
| 3.3.5 体外ACE抑制活性的测定 | 第50页 |
| 3.3.6 体内ACE抑制活性的测定 | 第50-51页 |
| 3.3.7 米糠肽的分离纯化 | 第51页 |
| 3.3.7.1 超滤 | 第51页 |
| 3.3.7.2 葡聚糖凝胶色谱 | 第51页 |
| 3.3.7.3 反相高效液相色谱 | 第51页 |
| 3.3.8 米糠肽的氨基酸序列测定 | 第51页 |
| 3.3.9 米糠肽与人体ACE的模拟分子对接 | 第51-52页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第52-60页 |
| 3.4.1 米糠蛋白和米糠酶解物的制备与条件选择 | 第52-53页 |
| 3.4.1.1 米糠蛋白的制备 | 第52页 |
| 3.4.1.2 米糠蛋白酶解物的制备 | 第52-53页 |
| 3.4.2 米糠肽的分离纯化及活性测定 | 第53-57页 |
| 3.4.2.1 米糠蛋白酶解物的抗氧化及ACE抑制活性 | 第53-55页 |
| 3.4.2.2 米糠蛋白酶解物<4 kDa组分的分离纯化及活性测定 | 第55-57页 |
| 3.4.3 米糠肽的结构鉴定及模拟分子对接 | 第57-60页 |
| 3.4.3.1 米糠肽的氨基酸序列测定 | 第57-58页 |
| 3.4.3.2 米糠肽的模拟分子对接 | 第58-60页 |
| 第4章 磁性纳米颗粒固定化双酶的制备、表征及应用 | 第60-74页 |
| 4.1 引言 | 第60页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第60-62页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第60页 |
| 4.2.2 试验试剂 | 第60-61页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第61-62页 |
| 4.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 4.3.1 壳聚糖-多聚磷酸钠磁性纳米颗粒固定化双酶的制备 | 第62页 |
| 4.3.1.1 Fe3O4纳米颗粒（FMNPs）的制备 | 第62页 |
| 4.3.1.2 壳聚糖-多聚磷酸钠磁性纳米颗粒(CT-FMNPs)的制备 | 第62页 |
| 4.3.1.3 复合载体固定化双酶磁性纳米颗粒（CT-DE-FMNPs）的制备 | 第62页 |
| 4.3.2 CT-DE-FMNPS的制备条件优化 | 第62-64页 |
| 4.3.2.1 水解度测定 | 第62页 |
| 4.3.2.2 酶回收率测定 | 第62-63页 |
| 4.3.2.3 碱性蛋白酶与胰蛋白酶质量比 | 第63页 |
| 4.3.2.4 加酶量 | 第63页 |
| 4.3.2.5 反应pH | 第63页 |
| 4.3.2.6 酶解温度 | 第63页 |
| 4.3.2.7CT-FMNPs与双酶液的吸附比 | 第63页 |
| 4.3.2.8 吸附时间 | 第63-64页 |
| 4.3.2.9 戊二醛含量 | 第64页 |
| 4.3.3 CT-DE-FMNPS的表征 | 第64页 |
| 4.3.3.1 红外光谱（FTIR） | 第64页 |
| 4.3.3.2 X-射线衍射（XRD） | 第64页 |
| 4.3.3.3 场发射透射电子显微镜（TEM） | 第64页 |
| 4.3.3.4 PPMS-9 物理性能测试仪-磁滞回线 | 第64页 |
| 4.3.4 CT-DE-FMNPS的重复利用性 | 第64-65页 |
| 4.3.5 CT-DE-FMNPS在制备活性肽方面的应用 | 第65页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第65-74页 |
| 4.4.1 CT-DE-FMNPS的制备 | 第65-66页 |
| 4.4.2 CT-DE-FMNPS的制备条件优化 | 第66-67页 |
| 4.4.3 CT-DE-FMNPS的表征 | 第67-71页 |
| 4.4.3.1 红外光谱（FTIR） | 第67-68页 |
| 4.4.3.2X-射线衍射（XRD） | 第68-69页 |
| 4.4.3.3 场发射透射电镜（TEM） | 第69-70页 |
| 4.4.3.4 磁性能（VSM） | 第70-71页 |
| 4.4.4 CT-DE-FMNPS的重复利用性 | 第71页 |
| 4.4.5 CT-DE-FMNPS的应用 | 第71-74页 |
| 第5章 结论与展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-84页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第84-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
