| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 前言 | 第8-21页 |
| ·DHA的简介 | 第8-13页 |
| ·DHA的生理功能 | 第8页 |
| ·DHA主要应用 | 第8-9页 |
| ·DHA的市场情况 | 第9页 |
| ·DHA的生物来源 | 第9-10页 |
| ·DHA的合成途径 | 第10-13页 |
| ·DHA生产菌株的育种策略和发展趋势 | 第13-14页 |
| ·DHA生产菌株的育种策略 | 第13页 |
| ·发展趋势 | 第13-14页 |
| ·原生质体融合育种 | 第14-19页 |
| ·原生质体融合技术原理和优点 | 第14-15页 |
| ·原生质体融合的一般步骤 | 第15-19页 |
| ·研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| ·本论文的研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-32页 |
| ·实验仪器和材料 | 第21-23页 |
| ·菌株 | 第21页 |
| ·主要仪器 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·培养基 | 第22-23页 |
| ·溶液 | 第23页 |
| ·RAPD-PCR所用引物 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-32页 |
| ·菌体培养及收集 | 第23-24页 |
| ·原生质体的制备与再生 | 第24页 |
| ·原生质体制备条件的优化 | 第24-25页 |
| ·黑曲霉原生质体灭活 | 第25页 |
| ·原生质体融合 | 第25页 |
| ·融合子筛选 | 第25-26页 |
| ·细胞干重、油脂含量及DHA的测定方法 | 第26-27页 |
| ·融合菌株的遗传稳定性 | 第27页 |
| ·融合子的RAPD验证 | 第27-28页 |
| ·淀粉转化率的测定 | 第28-29页 |
| ·转录组学分析 | 第29-32页 |
| 3 结果与讨论 | 第32-60页 |
| ·原生质体制备及再生条件的确定 | 第32-39页 |
| ·黑曲霉3.316原生质体制备条件及再生条件的确定 | 第32-35页 |
| ·裂殖壶菌原生质体制备与再生条件的确定 | 第35-39页 |
| ·黑曲霉3.316原生质体的灭活 | 第39-40页 |
| ·原生质体融合条件的确定 | 第40-42页 |
| ·促溶剂PEG6000质量分数的影响 | 第40-41页 |
| ·融合时间的影响 | 第41-42页 |
| ·融合温度的影响 | 第42页 |
| ·融合子的获得 | 第42-46页 |
| ·融合子初筛 | 第42-43页 |
| ·融合子复筛 | 第43-44页 |
| ·融合菌株稳定性分析 | 第44-45页 |
| ·融合子M-3的RAPD分析 | 第45-46页 |
| ·淀粉转化率的测定 | 第46页 |
| ·转录组分析 | 第46-60页 |
| ·原始数据质量统计 | 第47-48页 |
| ·数据组装 | 第48-49页 |
| ·比对分析 | 第49页 |
| ·基因表达定量分析 | 第49-51页 |
| ·基因功能注释及分类 | 第51-54页 |
| ·Pathway富集分析 | 第54-57页 |
| ·主要差异代谢通路的转录组特征 | 第57-60页 |
| 4 结论 | 第60-61页 |
| 5 展望 | 第61-62页 |
| 6 参考文献 | 第62-69页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第69-70页 |
| 8 致谢 | 第70-71页 |
| 附录 | 第71-75页 |