| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-30页 |
| ·花生资源概况 | 第12-13页 |
| ·花生的组成及其营养价值 | 第13-14页 |
| ·脂肪 | 第13页 |
| ·花生蛋白质 | 第13-14页 |
| ·碳水化合物和其他 | 第14页 |
| ·现行花生油加工工艺 | 第14-15页 |
| ·花生油制取工艺 | 第14页 |
| ·现行工艺存在的问题 | 第14-15页 |
| ·水酶法提油工艺 | 第15-19页 |
| ·水酶法提油工艺的研究历史与现状 | 第15-16页 |
| ·水酶法提油工艺原理 | 第16页 |
| ·水酶法工艺的主要影响因素 | 第16-18页 |
| ·水酶法提油工艺的评价 | 第18-19页 |
| ·植物来源活性肽的研究 | 第19-22页 |
| ·抗氧化活性肽 | 第21-22页 |
| ·ACE活性抑制肽 | 第22页 |
| ·立题意义与背景 | 第22-24页 |
| ·本论文研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-30页 |
| 第二章 花生的水酶法提油工艺 | 第30-51页 |
| ·前言 | 第30页 |
| ·实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| ·测定方法 | 第31-33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-49页 |
| ·去皮花生成分分析 | 第33页 |
| ·不同破碎方式对游离油得率的影响 | 第33-36页 |
| ·碱提过程对工艺的影响 | 第36-38页 |
| ·固液比对总蛋白质与总油提取率的影响 | 第36页 |
| ·pH对总蛋白质与总油提取率的影响 | 第36-37页 |
| ·温度对总蛋白质与总油提取率的影响 | 第37页 |
| ·时间对总蛋白质与总油提取率的影响 | 第37-38页 |
| ·不同蛋白酶酶解效果的比较 | 第38-42页 |
| ·Alcalase与其他酶联合酶解的效果 | 第42-44页 |
| ·Alcalase与其他蛋白酶联合作用的效果 | 第42-43页 |
| ·Alcalase与碳水化合物酶联合酶解的效果 | 第43-44页 |
| ·Alcalase酶解参数对游离油与水解蛋白得率的影响 | 第44-48页 |
| ·酶用量对游离油与水解蛋白得率的影响 | 第44-46页 |
| ·酶解温度与pH的确定 | 第46-47页 |
| ·酶解时间对游离油得率与水解蛋白得率的影响 | 第47-48页 |
| ·洗渣步骤对总游离油得率与水解蛋白得率的影响 | 第48-49页 |
| ·本章小结 | 第49页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 第三章 乳状液的破乳探讨及油质量测定 | 第51-72页 |
| ·前言 | 第51页 |
| ·材料与仪器 | 第51-52页 |
| ·实验方法 | 第52-54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-69页 |
| ·乳状液成分 | 第54-55页 |
| ·乳状液中的液晶 | 第55页 |
| ·乳状液中蛋白质性质对乳状液稳定性的影响 | 第55-58页 |
| ·乳状液中蛋白质的氨基酸组成 | 第55-56页 |
| ·蛋白质乳化力指标与乳化稳定性 | 第56-57页 |
| ·蛋白质的表面疏水性 | 第57页 |
| ·蛋白质的圆二色性 | 第57-58页 |
| ·乳状液流变性质的研究 | 第58-60页 |
| ·花生乳状液的静态流变性质 | 第58-59页 |
| ·花生乳状液的动态流变性质 | 第59-60页 |
| ·水酶法工艺中乳状液破乳方式的确定 | 第60-62页 |
| ·冷冻解冻破乳条件的优化 | 第62-67页 |
| ·冷冻温度对乳状液中油回收率的影响 | 第63-65页 |
| ·冷冻时间对乳状液中油回收率的影响 | 第65-66页 |
| ·解冻温度对乳状液中油回收率的影响 | 第66-67页 |
| ·离心转速对乳状液中油回收率的影响 | 第67页 |
| ·花生油的质量 | 第67-69页 |
| ·花生油的脂肪酸组成 | 第67-68页 |
| ·花生油的常规指标 | 第68-69页 |
| ·花生油中V_E含量 | 第69页 |
| ·本章小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 第四章 花生水解蛋白的回收及功能性质研究 | 第72-89页 |
| ·前言 | 第72页 |
| ·材料与设备 | 第72-73页 |
| ·实验方法 | 第73-76页 |
| ·结果与讨论 | 第76-86页 |
| ·纳滤浓缩实验 | 第76-79页 |
| ·纳滤的操作模式 | 第77页 |
| ·操作参数对纳滤膜分离性能的影响 | 第77-79页 |
| ·花生水解蛋白粉的制备 | 第79-80页 |
| ·纳滤前后花生水解组成比较 | 第80-81页 |
| ·花生水解蛋白的成分 | 第80页 |
| ·花生水解蛋白的氨基酸组成 | 第80-81页 |
| ·花生水解蛋白的理化性质 | 第81-82页 |
| ·花生水解蛋白的溶解特性 | 第81页 |
| ·花生水解蛋白的粘度 | 第81-82页 |
| ·花生水解蛋白粉的吸湿性与保湿性 | 第82页 |
| ·花生水解蛋白粉体外抗氧化活性研究 | 第82-85页 |
| ·花生水解蛋白还原能力 | 第82-83页 |
| ·花生水解蛋白抗脂质体过氧化能力 | 第83-84页 |
| ·花生水解蛋白清除DPPH自由基能力 | 第84页 |
| ·花生水解蛋白清除.OH自由基能力 | 第84-85页 |
| ·花生水解蛋白清除O_2~(.-)自由基能力 | 第85页 |
| ·花生水解蛋白抑制ACE活性 | 第85-86页 |
| ·本章小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-89页 |
| 第五章 花生水解蛋白的除糖及抗疲劳研究 | 第89-105页 |
| ·前言 | 第89页 |
| ·实材料与仪器 | 第89-90页 |
| ·实验方法 | 第90-93页 |
| ·结果与讨论 | 第93-103页 |
| ·花生水解蛋白中的糖 | 第93-94页 |
| ·不同吸附树脂吸附率的比较 | 第94-95页 |
| ·DA201-C大孔吸附树脂的静态吸附过程 | 第95页 |
| ·花生水解蛋白的静态解吸 | 第95-96页 |
| ·DA201-C大孔吸附树脂的动态吸附实验 | 第96-97页 |
| ·样品穿透体积的测定 | 第96-97页 |
| ·溶液pH对大孔吸附树脂动态吸附性能的影响 | 第97页 |
| ·大孔吸附树脂动态解析与花生水解蛋白中糖的去除 | 第97-98页 |
| ·除糖后花生肽的主要成分 | 第98-99页 |
| ·花生肽对红细胞的保护作用 | 第99-100页 |
| ·花生肽的抗疲劳实验 | 第100-103页 |
| ·小鼠常压耐缺氧存活时间 | 第100页 |
| ·小鼠抗疲劳实验 | 第100-103页 |
| ·本章小结 | 第103页 |
| 参考文献 | 第103-105页 |
| 第六章 花生水解蛋白中功能肽的分离纯化和结构鉴定 | 第105-123页 |
| ·前言 | 第105页 |
| ·材料与仪器 | 第105-106页 |
| ·实验方法 | 第106-108页 |
| ·结果与讨论 | 第108-120页 |
| ·不同酶作用得到的花生水解蛋白抑制ACE活性与清除.OH效果 | 第108-109页 |
| ·水解时间对产物ACE活性抑制率与.OH清除率的影响 | 第109页 |
| ·浓度对Sephadex G-25分离花生水解蛋白效果的影响 | 第109-110页 |
| ·花生水解蛋白中不同组分的ACE活性抑制率与.OH清除率 | 第110-111页 |
| ·DA201-C大孔吸附树脂分离F组分 | 第111-112页 |
| ·半制备反相高压液相色谱(RP-HPLC)分离F-60组分 | 第112-113页 |
| ·RP-HPLC鉴定F-60-6组分的纯度 | 第113页 |
| ·半制备RP-HPLC分离纯化组分F-60-6 | 第113-114页 |
| ·F-60-6-Ⅰ组分的纯度鉴定 | 第114-115页 |
| ·RP-HPLC分析F-60-6-Ⅰ的图谱 | 第114-115页 |
| ·组分F-60-6-Ⅰ的SE-HPLC图谱 | 第115页 |
| ·F-60-6-Ⅰ组分的氨基酸组成分析 | 第115-116页 |
| ·高压液相-质谱联用解析F-60-6-Ⅰ组分 | 第116-118页 |
| ·F-60-6-Ⅰ的结构与其抑制ACE活性与清除OH效果功能性质探讨 | 第118-119页 |
| ·F-60-3组分的分离纯化 | 第119-120页 |
| ·F-60-3组分的RP-HPLC图 | 第119-120页 |
| ·F-60-3组分的相对分子质量分布 | 第120页 |
| ·F-60-3组分的氨基酸组成 | 第120页 |
| ·本章小结 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 主要结论 | 第123-125页 |
| 论文创新点 | 第125-126页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第126-127页 |
| 致谢 | 第127页 |
