摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
缩略词 | 第13-20页 |
第一章 绪论 | 第20-37页 |
1.1 马铃薯产量及国内外消费情况 | 第20页 |
1.2 我国Ⅱ型糖尿病现状 | 第20-21页 |
1.3 餐后血糖概念及与糖尿病的关系 | 第21页 |
1.4 马铃薯餐后血糖研究进展 | 第21-23页 |
1.4.1 马铃薯品种差异等对餐后血糖的影响 | 第22页 |
1.4.2 烹饪方式对马铃薯餐后血糖的影响 | 第22-23页 |
1.5 烹饪方式对马铃薯营养成分变化的研究进展 | 第23-29页 |
1.5.1 烹饪方式对酚类等物质的影响 | 第23-28页 |
1.5.2 烹饪方式对抗氧化的影响 | 第28-29页 |
1.6 淀粉类食物微观结构及其消化特性的研究进展 | 第29-36页 |
1.6.1 分子层面变化对淀粉消化的影响 | 第30-33页 |
1.6.2 亚细胞结构层面对淀粉消化的影响 | 第33-36页 |
1.7 本研究技术线路图 | 第36页 |
1.8 本研究的意义 | 第36-37页 |
第二章 烹饪方式对马铃薯植物化学素及抗氧化特性的影响 | 第37-55页 |
2.1 目的和意义 | 第37页 |
2.2 材料与仪器 | 第37-38页 |
2.2.1 材料 | 第37页 |
2.2.2 主要试剂 | 第37-38页 |
2.2.3 仪器 | 第38页 |
2.3 烹饪过程及烹饪样品制备 | 第38-39页 |
2.3.1 马铃薯烹饪前处理 | 第38页 |
2.3.2 马铃薯不同烹饪方式的确定 | 第38-39页 |
2.3.3 不同烹饪后样品的处理 | 第39页 |
2.4 方法 | 第39-43页 |
2.4.1 马铃薯基础营养指标的测定 | 第39-40页 |
2.4.2 总酚含量的测定 | 第40页 |
2.4.3 酚酸含量的测定 | 第40-41页 |
2.4.4 类胡萝卜素含量测定 | 第41-42页 |
2.4.5 花色苷含量的测定 | 第42页 |
2.4.6 DPPH自由基清除实验 | 第42页 |
2.4.7 数据统计与分析 | 第42-43页 |
2.5 结果与分析 | 第43-54页 |
2.5.1 烹饪方式马铃薯基础营养物质的影响 | 第43-47页 |
2.5.2 烹饪方式对马铃薯总酚含量的影响 | 第47-48页 |
2.5.3 烹饪方式对马铃薯主要酚酸含量的影响 | 第48-50页 |
2.5.4 烹饪方式马铃薯类胡萝卜素含量的影响 | 第50-51页 |
2.5.5 烹饪方式对马铃薯花色苷含量的影响 | 第51-52页 |
2.5.6 烹饪方式对马铃薯DPPH自由基消除能力的影响 | 第52-53页 |
2.5.7 马铃薯DPPH抗氧化活性与酚类物质含量相关性分析 | 第53-54页 |
2.6 本章小结 | 第54-55页 |
第三章 不同烹饪方式对马铃薯微观结构及消化特性的影响 | 第55-72页 |
3.1 目的和意义 | 第55页 |
3.2 材料与仪器 | 第55-56页 |
3.2.1 材料 | 第55-56页 |
3.2.2 仪器 | 第56页 |
3.3 方法 | 第56-61页 |
3.3.1 不同烹饪处理后马铃薯微观结构变化 | 第56页 |
3.3.2 不同烹饪后马铃薯淀粉体外模拟消化 | 第56-57页 |
3.3.3 模拟消化体系的构建 | 第57-58页 |
3.3.4 不同烹饪后马铃薯消化过程结构变化 | 第58-59页 |
3.3.5 低温贮藏及复热对煮马铃薯淀粉晶型的影响 | 第59页 |
3.3.6 低温贮藏及复热对煮马铃薯热力学变化的影响 | 第59页 |
3.3.7 低温贮藏及复热对马铃薯淀粉消化特性的影响 | 第59页 |
3.3.8 油炸和空气炸对马铃薯热力学变化的影响 | 第59-60页 |
3.3.9 不同烹饪马铃薯的餐后血糖变化研究 | 第60-61页 |
3.4 结果与讨论 | 第61-70页 |
3.4.1 马铃薯微观结构的表征 | 第61页 |
3.4.2 不同烹饪后马铃薯消化过程微观结构变化 | 第61-65页 |
3.4.3 不同烹饪马铃薯的模拟消化速率方程 | 第65-67页 |
3.4.4 低温及微波复热对马铃薯淀粉结晶度的影响 | 第67-68页 |
3.4.5 不同处理后马铃薯热力学的变化 | 第68-69页 |
3.4.6 不同烹饪后的马铃薯餐后血糖变化 | 第69-70页 |
3.4.7 不同烹饪处理的马铃薯餐后血糖变化 | 第70页 |
3.5 本章小结 | 第70-72页 |
第四章 不同烹饪马铃薯对大鼠生理及肠道菌群的影响 | 第72-95页 |
4.1 目的和意义 | 第72页 |
4.2 材料与仪器 | 第72-74页 |
4.2.1 材料 | 第72-73页 |
4.2.2 主要试剂及耗材 | 第73页 |
4.2.3 仪器 | 第73-74页 |
4.3 实验设计 | 第74-75页 |
4.3.1 大鼠实验流程图 | 第74页 |
4.3.2 大鼠常规指标的测定 | 第74页 |
4.3.3 不同实验组大鼠粪便样品的收集及保存 | 第74页 |
4.3.4 粪便菌群DNA的提取及质量鉴定 | 第74-75页 |
4.4 数据统计与分析 | 第75-76页 |
4.5 结果与讨论 | 第76-93页 |
4.5.1 不同实验组大鼠体重变化 | 第76页 |
4.5.2 不同实验组大鼠血糖变化 | 第76-77页 |
4.5.3 不同实验组大鼠血脂变化 | 第77-79页 |
4.5.4 大鼠粪便菌群DNA提取及质量分析 | 第79-80页 |
4.5.5 测序后Reads拼接结果分析 | 第80页 |
4.5.6 OTU统计分析及注释 | 第80-82页 |
4.5.7 Alpha多样性分析 | 第82-83页 |
4.5.8 Beta多样性分析 | 第83-85页 |
4.5.9 物种丰度统计及群落组成分析 | 第85页 |
4.5.10 不同组OUT序列的信息比对注释 | 第85-86页 |
4.5.11 样品中微生物在门分类水平上的差异 | 第86-88页 |
4.5.12 样品中微生物在纲分类水平上的差异 | 第88-89页 |
4.5.13 样品中微生物在目分类水平上的差异 | 第89-91页 |
4.5.14 样品中微生物在科分类水平上的差异 | 第91-92页 |
4.5.15 样品中微生物在属分类水平上的差异 | 第92-93页 |
4.5.16 不同饲喂组之间拟杆菌门和厚壁菌门比值变化 | 第93页 |
4.6 本章小结 | 第93-95页 |
第五章 细胞壁及绿原酸对马铃薯淀粉消化影响的机制 | 第95-110页 |
5.1 目的和意义 | 第95-96页 |
5.2 材料及仪器 | 第96页 |
5.2.1 材料 | 第96页 |
5.2.2 仪器 | 第96页 |
5.3 马铃薯细胞壁对淀粉消化的影响 | 第96-97页 |
5.3.1 有无细胞壁的马铃薯淀粉颗粒的制备 | 第96-97页 |
5.3.2 不同温度处理后马铃薯微观颗粒结构变化 | 第97页 |
5.3.3 有无细胞壁结构对马铃薯淀粉热力学性质的影响 | 第97页 |
5.3.4 有无细胞壁结构马铃薯淀粉颗粒的体外水解 | 第97页 |
5.4 绿原酸对淀粉性质的影响 | 第97-98页 |
5.4.1 绿原酸对淀粉热力学性质的影响 | 第97-98页 |
5.4.2 绿原酸对马铃薯淀粉糊化凝胶微观结构的影响 | 第98页 |
5.5 绿原酸对淀粉颗粒消化特性的影响 | 第98-100页 |
5.5.1 绿原酸对α-淀粉酶抑制作用 | 第98-99页 |
5.5.2 酶动力学和抑制模型的构建 | 第99页 |
5.5.3 绿原酸与酶分子的分子模拟对接 | 第99-100页 |
5.6 结果与讨论 | 第100-109页 |
5.6.1 有无细胞壁的马铃薯淀粉颗粒微观结构 | 第100-101页 |
5.6.2 有无细胞壁的马铃薯淀粉颗粒受热过程中微观结构变化 | 第101-102页 |
5.6.3 有无细胞壁结构对马铃薯淀粉晶形的影响 | 第102页 |
5.6.4 细胞壁结构对淀粉热力学性质的影响 | 第102-103页 |
5.6.5 细胞壁对马铃薯淀粉颗粒消化速率的影响 | 第103-104页 |
5.6.6 绿原酸对淀粉热力学性质的影响 | 第104-105页 |
5.6.7 绿原酸对淀粉老化性质的影响 | 第105-106页 |
5.6.8 绿原酸-淀粉复合膜的微观结构 | 第106页 |
5.6.9 绿原酸对淀粉消化的抑制作用 | 第106-107页 |
5.6.10 酶动力学及抑制类型 | 第107-108页 |
5.6.11 基于分子对接模拟的绿原酸抑制α-淀粉酶活性的机理探究 | 第108-109页 |
5.7 本章小结 | 第109-110页 |
第六章 绿原酸对高脂饲喂小鼠肝脏转录组的影响 | 第110-133页 |
6.1 目的和意义 | 第110页 |
6.2 材料与仪器 | 第110-111页 |
6.2.1 材料 | 第110页 |
6.2.2 仪器 | 第110-111页 |
6.3 研究方法 | 第111-113页 |
6.3.1 不同组小鼠的饲喂 | 第111-112页 |
6.3.2 小鼠生理指标的测定 | 第112页 |
6.3.3 小鼠血糖血脂变化的测定 | 第112页 |
6.3.4 小鼠的解剖及脏器指数的测定 | 第112页 |
6.3.5 小鼠肝脏与脂肪切片 | 第112页 |
6.3.6 小鼠肝脏转录组水平变化研究 | 第112-113页 |
6.4 结果与讨论 | 第113-132页 |
6.4.1 不同饲喂组小鼠体重变化 | 第113-114页 |
6.4.2 不同饲喂组小鼠空腹血糖变化 | 第114页 |
6.4.3 不同饲喂组小鼠血脂变化 | 第114-115页 |
6.4.4 不同实验组小鼠脏器指数变化 | 第115-116页 |
6.4.5 不同饲喂组小鼠肝脏组织形态变化 | 第116-117页 |
6.4.6 不同饲喂组小鼠脂肪组织形态变化 | 第117页 |
6.4.7 小鼠肝脏RNA质量分析 | 第117-118页 |
6.4.8 数据拼接结果 | 第118-119页 |
6.4.9 已知转录本的差异表达火山图 | 第119-121页 |
6.4.10 样本间差异基因表达分析火山图 | 第121-122页 |
6.4.11 差异功能基因Gene Ontology的基因功能富集分析 | 第122-125页 |
6.4.12 差异基因的KEGG生物通路富集分析 | 第125-130页 |
6.4.13 基于KEGG代谢通路的糖代谢相关基因表达水平的初步分析 | 第130-131页 |
6.4.14 不同组样品间的相关性分析 | 第131-132页 |
6.5 本章小结 | 第132-133页 |
第七章 绿原酸对高脂饲喂小鼠粪便菌群结构的影响 | 第133-150页 |
7.1 目的和意义 | 第133页 |
7.2 材料与仪器 | 第133-134页 |
7.2.1 材料与试剂 | 第133页 |
7.2.2 仪器 | 第133-134页 |
7.3 方法与技术线路 | 第134-135页 |
7.3.1 小鼠粪便的获取及DNA的提取检验 | 第134页 |
7.3.2 小鼠粪便菌群16S rDNA信息分析流程 | 第134-135页 |
7.4 实验结果 | 第135-149页 |
7.4.1 上机测序原始数据统计 | 第135-136页 |
7.4.2 Clean数据的优化与统计 | 第136页 |
7.4.3 OTU分布Venn图 | 第136-137页 |
7.4.4 物种累积曲线 | 第137-138页 |
7.4.5 Alpha多样性分析 | 第138-139页 |
7.4.6 Beta多样性分析 | 第139-140页 |
7.4.7 样品主坐标分析分析 | 第140-141页 |
7.4.8 样品中微生物在门水平上的差异性分析 | 第141-142页 |
7.4.9 样品中微生物在纲水平上的差异性分析 | 第142-144页 |
7.4.10 样品中微生物在目水平上的差异性分析 | 第144-145页 |
7.4.11 样品中微生物在科水平上的差异性分析 | 第145-147页 |
7.4.12 样品中微生物在属水平上的差异性分析 | 第147-148页 |
7.4.13 不同组小鼠粪便菌群中拟杆菌门与厚壁菌门比值差异分析 | 第148-149页 |
7.5 本章小结 | 第149-150页 |
第八章 结论与展望 | 第150-154页 |
8.1 结论 | 第150-152页 |
8.2 创新点 | 第152-153页 |
8.3 展望 | 第153-154页 |
参考文献 | 第154-166页 |
作者简介 | 第166-167页 |
博士在学期间取得科研成果 | 第167-168页 |
致谢 | 第168页 |