| 致谢 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-12页 |
| abstract | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第23-42页 |
| 1.1 研究背景 | 第23页 |
| 1.2 果实采后保鲜的生理机制 | 第23-25页 |
| 1.3 葡萄常见的保鲜方式及研究进展 | 第25-28页 |
| 1.3.1 二氧化碳气调保鲜 | 第26页 |
| 1.3.2 二氧化硫保鲜 | 第26-27页 |
| 1.3.3 二氧化氯保鲜 | 第27页 |
| 1.3.4 1-甲基环丙烯保鲜 | 第27页 |
| 1.3.5 壳聚糖涂膜保鲜 | 第27-28页 |
| 1.3.6 臭氧保鲜 | 第28页 |
| 1.3.7 辐射保鲜 | 第28页 |
| 1.4 植物中信号分子硫化氢保鲜机理研究进展 | 第28-31页 |
| 1.4.1 硫化氢的性质及简介 | 第28-29页 |
| 1.4.2 硫化氢在植物体内合成 | 第29页 |
| 1.4.3 硫化氢在植物体信号功能 | 第29-31页 |
| 1.5 代谢组研究方法及进展 | 第31-33页 |
| 1.5.1 代谢组概念 | 第31页 |
| 1.5.2 代谢组学研究技术及发展进展 | 第31-33页 |
| 1.6 转录组研究方法及进展 | 第33-34页 |
| 1.6.1 转录组概念 | 第33页 |
| 1.6.2 转录组研究技术及发展进展 | 第33-34页 |
| 1.7 白藜芦醇及其糖苷的研究现状 | 第34-38页 |
| 1.7.1 白藜芦醇在葡萄中存在状况及功能 | 第35页 |
| 1.7.2 白藜芦醇对人体的活性功能 | 第35-37页 |
| 1.7.3 白藜芦醇及其糖苷检测方法的研究 | 第37-38页 |
| 1.8 花青素研究现状 | 第38-39页 |
| 1.8.1 花青素结构及合成途径 | 第38-39页 |
| 1.8.2 花青素生物功能 | 第39页 |
| 1.9 论文研究的目的、意义及内容 | 第39-42页 |
| 1.9.1 研究目的与意义 | 第39-40页 |
| 1.9.2 研究技术路线 | 第40页 |
| 1.9.3 研究内容 | 第40-42页 |
| 第二章 硫化氢对采后葡萄贮藏期生理生化性质的影响 | 第42-71页 |
| 2.1 材料与方法 | 第42-50页 |
| 2.1.1 主要试剂与设备 | 第42-44页 |
| 2.1.2 材料及其处理 | 第44页 |
| 2.1.3 葡萄贮藏期的表观评定方法 | 第44页 |
| 2.1.4 果梗褐变指数及果实失重率、硬度的测定 | 第44-45页 |
| 2.1.5 可溶性固形物、还原糖、可滴定酸及可溶性蛋白质测定 | 第45-46页 |
| 2.1.6 叶绿素、类胡萝卜素的测定 | 第46页 |
| 2.1.7 抗坏血酸、总酚的测定 | 第46-47页 |
| 2.1.8 MDA、H_2O_2和·O_2~-含量的测定 | 第47-49页 |
| 2.1.9 POD、APX、CAT的活性测定 | 第49-50页 |
| 2.1.10 LOX和PPO的活性测定 | 第50页 |
| 2.1.11 统计分析方法 | 第50页 |
| 2.2 结果与分析 | 第50-69页 |
| 2.2.1 硫化氢对采后葡萄贮藏期表观的影响 | 第50-52页 |
| 2.2.2 硫化氢对采后葡萄品质指标的影响 | 第52-56页 |
| 2.2.3 硫化氢对采后葡萄理化指标的影响 | 第56-59页 |
| 2.2.4 硫化氢对采后葡萄叶绿素、类胡萝卜素的影响 | 第59-62页 |
| 2.2.5 硫化氢对采后葡萄抗氧化物质含量的影响 | 第62-63页 |
| 2.2.6 硫化氢对采后葡萄衰老过程中MDA、H_2O_2和·O_2~-含量的影响 | 第63-66页 |
| 2.2.7 硫化氢对采后葡萄衰老过程中POD、CAT和APX活性的影响 | 第66-68页 |
| 2.2.8 硫化氢对采后葡萄衰老过程中LOX、PPO活性的影响 | 第68-69页 |
| 2.3 结论 | 第69-71页 |
| 第三章 硫化氢处理对采后葡萄的转录水平的影响 | 第71-101页 |
| 3.1 材料与方法 | 第71-76页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第71-72页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第72页 |
| 3.1.3 方法 | 第72-73页 |
| 3.1.4 转录组表达谱分析 | 第73-74页 |
| 3.1.5 生物信息学分析 | 第74-75页 |
| 3.1.6 定量PCR | 第75-76页 |
| 3.2 结果与分析 | 第76-99页 |
| 3.2.1 测序数据及其质量控制 | 第76-77页 |
| 3.2.2 转录组数据与参考基因组序列比对效率比对 | 第77-78页 |
| 3.2.3 基因表达量整体分析 | 第78-80页 |
| 3.2.4 差异表达基因分析及筛选 | 第80-81页 |
| 3.2.5 差异表达基因功能注释和富集分析 | 第81-85页 |
| 3.2.6 差异表达基因KEGG注释 | 第85-89页 |
| 3.2.7 差异表达基因KEGG代谢通路富集分析 | 第89-92页 |
| 3.2.8 显著影响的通路的差异表达基因验证 | 第92-96页 |
| 3.2.9 其他显著差异表达基因验证 | 第96-99页 |
| 3.3 结论 | 第99-101页 |
| 第四章 硫化氢处理采后葡萄代谢水平的影响 | 第101-123页 |
| 4.1 材料与方法 | 第101-107页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第101-102页 |
| 4.1.2 主要仪器与设备 | 第102页 |
| 4.1.3 材料及样品信息 | 第102页 |
| 4.1.4 样品预处理及代谢物提取 | 第102-103页 |
| 4.1.5 代谢组分析方法 | 第103-104页 |
| 4.1.6 HPLC-MS色谱条件 | 第104页 |
| 4.1.7 信息分析流程 | 第104-107页 |
| 4.2 结果与分析 | 第107-122页 |
| 4.2.1 质控分析 | 第107-108页 |
| 4.2.2 PCA主成分分析 | 第108-109页 |
| 4.2.3 偏最小二乘判别分析 | 第109-112页 |
| 4.2.4 单变量分析 | 第112-114页 |
| 4.2.5 差异性代谢物筛选 | 第114-117页 |
| 4.2.6 差异性代谢物的代谢通路富集分析 | 第117-122页 |
| 4.3 结论 | 第122-123页 |
| 第五章 硫化氢对葡萄的白藜芦醇和花青素合成通路的调控 | 第123-139页 |
| 5.1 材料与方法 | 第123-127页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第123-124页 |
| 5.1.2 主要仪器与设备 | 第124页 |
| 5.1.3 材料 | 第124-125页 |
| 5.1.4 类黄酮测定 | 第125页 |
| 5.1.5 白藜芦醇的提取 | 第125页 |
| 5.1.6 白藜芦醇的纯化 | 第125-126页 |
| 5.1.7 白藜芦醇标准曲线测定 | 第126页 |
| 5.1.8 葡萄样品中白藜芦醇HPLC测定 | 第126-127页 |
| 5.1.9 花青素分析测定方法 | 第127页 |
| 5.1.10 转录组和代谢组分析实验材料与方法 | 第127页 |
| 5.1.11 定量PCR方法 | 第127页 |
| 5.2 结果与分析 | 第127-137页 |
| 5.2.1 类黄酮含量分析 | 第127-128页 |
| 5.2.2 白藜芦醇含量分析 | 第128页 |
| 5.2.3 花青素含量分析 | 第128-129页 |
| 5.2.4 白藜芦醇转录-代谢联合通路分析 | 第129-131页 |
| 5.2.5 白藜芦醇合成途径重要差异表达基因验证 | 第131-133页 |
| 5.2.6 硫化氢处理对白藜芦醇合成途径的调控机制 | 第133页 |
| 5.2.7 花青素转录-代谢联合通路分析 | 第133-135页 |
| 5.2.8 花青素合成途径重要差异表达基因验证 | 第135-136页 |
| 5.2.9 硫化氢处理对花青素合成途径的调控机制 | 第136-137页 |
| 5.3 结论 | 第137-139页 |
| 第六章 结论与展望 | 第139-142页 |
| 6.1 结论 | 第139-140页 |
| 6.2 本文创新点 | 第140页 |
| 6.3 展望 | 第140-142页 |
| 参考文献 | 第142-156页 |
| 攻读博士学位期间的学术活动及成果情况 | 第156页 |
