| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 海带简介 | 第11页 |
| 1.2 Fucoidan提取与纯化研究 | 第11-14页 |
| 1.2.1 Fucoidan的提取、纯化 | 第11-14页 |
| 1.2.2 Fucoidan的结构分析 | 第14页 |
| 1.3 Fucoidan的生物活性 | 第14-17页 |
| 1.3.1 抗氧化活性 | 第15页 |
| 1.3.2 抗病毒 | 第15-16页 |
| 1.3.3 抗肿瘤活性 | 第16页 |
| 1.3.4 降血脂活性 | 第16页 |
| 1.3.6 其他生理活性 | 第16-17页 |
| 1.4 本课题研究的目的、意义和主要内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 本课题研究的意义 | 第17页 |
| 1.4.2 本课题的研究目标 | 第17页 |
| 1.4.3 本课题的研究内容 | 第17-19页 |
| 第2章 海带岩藻聚糖测定方法的改进 | 第19-31页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 传统Dische法定量分析L-岩藻糖 | 第20-21页 |
| 2.2.2 振荡条件对显色稳定性的影响 | 第21页 |
| 2.2.3 温度对显色稳定性的影响 | 第21页 |
| 2.2.4 显色剂添加量对显色稳定性的影响 | 第21页 |
| 2.2.5 方法学考察 | 第21-22页 |
| 2.2.6 不同地区八种海带岩藻聚糖含量的测定 | 第22页 |
| 2.3 结果与分析 | 第22-29页 |
| 2.3.1 振荡对显色稳定性的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.2 温度对显色稳定性的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.3 L-半胱氨酸盐酸盐添加量对显色稳定性的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.4 不同比色法显色稳定性考察 | 第25-26页 |
| 2.3.5 L-岩藻糖标准曲线的绘制 | 第26-27页 |
| 2.3.6 方法学的考察 | 第27-29页 |
| 2.3.7 不同品种的海带中岩藻聚糖的含量测定 | 第29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第3章 海带岩藻聚糖的制备及纯化 | 第31-51页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第31-33页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-37页 |
| 3.2.1 岩藻聚糖提取方法的考察[68-69] | 第33-34页 |
| 3.2.2 单因素考察实验 | 第34-35页 |
| 3.2.3 正交实验设计 | 第35页 |
| 3.2.4 岩藻聚糖粗品部分理化性质的测定 | 第35-36页 |
| 3.2.5 岩藻聚糖的纯化 | 第36-37页 |
| 3.2.5.1 岩藻聚糖的初级纯化 | 第36页 |
| 3.2.5.2 DEAE-52纤维素阴离子交换层析分离纯化岩藻聚糖 | 第36页 |
| 3.2.5.3 葡聚糖G-200凝胶过滤层析法 | 第36-37页 |
| 3.2.6 不同海带岩藻聚糖中蛋白质的检测 | 第37页 |
| 3.2.7 海带岩藻聚糖纯度的鉴定及分子量的测定 | 第37页 |
| 3.3 实验结果 | 第37-49页 |
| 3.3.1 岩藻聚糖提取方法的确定 | 第37-40页 |
| 3.3.2 海带中岩藻聚糖的提取工艺优化 | 第40-43页 |
| 3.3.3 岩藻聚糖粗品化学成分分析 | 第43-44页 |
| 3.3.4 岩藻聚糖的初级纯化 | 第44页 |
| 3.3.5 DEAE-52纤维素阴离子交换层析分离纯化岩藻聚糖 | 第44-45页 |
| 3.3.6 葡聚糖凝胶分离纯化岩藻聚糖 | 第45-46页 |
| 3.3.7 不同岩藻聚糖组分的紫外扫描结果 | 第46-47页 |
| 3.3.8 HPLC法鉴定海带岩藻聚糖纯度及分子量的测定 | 第47-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第4章 岩藻聚糖的结构表征 | 第51-67页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第51-53页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第51-52页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第52-53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.2.1 海带岩藻聚糖单糖组成和比例的测定 | 第53-54页 |
| 4.2.2 不同岩藻聚糖组分硫酸根含量的测定 | 第54页 |
| 4.2.3 不同岩藻聚糖组分糖醛酸含量的测定 | 第54页 |
| 4.2.4 岩藻聚糖的红外光谱分析 | 第54页 |
| 4.2.5 岩藻聚糖的核磁共振分析 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-64页 |
| 4.3.1 岩藻聚糖中单糖组成及比例的测定 | 第55-57页 |
| 4.3.2 不同岩藻聚糖中硫酸根的含量 | 第57-58页 |
| 4.3.3 岩藻聚糖中糖醛酸含量的测定 | 第58-59页 |
| 4.3.4 岩藻聚糖的红外光谱分析 | 第59页 |
| 4.3.5 岩藻聚糖的核磁共振分析 | 第59-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-67页 |
| 第5章 岩藻聚糖的生理活性研究 | 第67-81页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第67-69页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第68-69页 |
| 5.2 实验方法 | 第69-71页 |
| 5.2.1 不同岩藻聚糖组分抑制肿瘤细胞的增殖作用 | 第69页 |
| 5.2.2 HeLa及HepG2细胞的复苏、培养 | 第69页 |
| 5.2.3 MTT法检测岩藻聚糖对肿瘤细胞存活率的影响 | 第69-70页 |
| 5.2.4 岩藻聚糖对油酸诱导HepG2细胞内脂质堆积的影响 | 第70-71页 |
| 5.3 结果与分析 | 第71-78页 |
| 5.3.1 不同岩藻聚糖组分抑制HeLa细胞的增殖作用 | 第71-73页 |
| 5.3.2 不同岩藻聚糖组分抑制HepG2细胞的增殖作用 | 第73-74页 |
| 5.3.3 岩藻聚糖对油酸诱导HepG2细胞内脂肪积累的影响 | 第74-78页 |
| 5.4 本章小结 | 第78-81页 |
| 第6章 结论和展望 | 第81-83页 |
| 6.1 结论 | 第81-82页 |
| 6.2 展望 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-89页 |
| 致谢 | 第89-91页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文和研究成果 | 第91页 |
