摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
0 前言 | 第12-23页 |
0.1 磷脂概述 | 第12-14页 |
0.1.1 结构 | 第12-13页 |
0.1.2 来源和性质 | 第13-14页 |
0.1.3 功能和应用 | 第14页 |
0.2 磷脂酰丝氨酸概述 | 第14-17页 |
0.2.1 结构与性质 | 第14-15页 |
0.2.2 分布与来源 | 第15-16页 |
0.2.3 生理功能及应用 | 第16-17页 |
0.3 磷脂酰丝氨酸的检测与分析 | 第17-20页 |
0.3.1 薄层色谱法(TLC) | 第17-18页 |
0.3.2 高效液相色谱法(HPLC) | 第18页 |
0.3.3 质谱技术(MS) | 第18页 |
0.3.4 ~1H/~(13)C核磁共振波谱法(~1H/~(13)C NMR) | 第18-19页 |
0.3.5 ~(31)p核磁共振波谱法(~(31)P NMR) | 第19-20页 |
0.4 磷脂酰丝氨酸的制备方法 | 第20-22页 |
0.4.1 提取法 | 第20页 |
0.4.2 酶转化法 | 第20-22页 |
0.5 本文研究目的及内容 | 第22-23页 |
1 磷脂检测与分析方法的建立 | 第23-43页 |
引言 | 第23-24页 |
1.1 材料与仪器 | 第24-25页 |
1.1.1 材料与试剂 | 第24页 |
1.1.2 仪器与设备 | 第24-25页 |
1.2 实验方法 | 第25-29页 |
1.2.1 南极磷虾总脂的提取 | 第25页 |
1.2.2 薄层色谱法分析磷脂组成 | 第25-26页 |
1.2.3 高效液相色谱法定量分析磷脂组成 | 第26-27页 |
1.2.4 核磁共振波谱法定量分析磷脂组成 | 第27-29页 |
1.3 结果与讨论 | 第29-42页 |
1.3.1 南极磷虾总脂的提取 | 第29页 |
1.3.2 TLC分析磷脂组成 | 第29-30页 |
1.3.3 HPLC分析磷脂组成 | 第30-35页 |
1.3.4 ~(31)P NMR分析磷脂组成 | 第35-41页 |
1.3.5 三种方法分析南极磷虾磷脂的结果比较 | 第41-42页 |
1.4 小结 | 第42-43页 |
2 富含n-3PUFA的磷脂酰丝氨酸的酶法合成工艺研究 | 第43-60页 |
引言 | 第43页 |
2.1 材料与仪器 | 第43-44页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第44页 |
2.2 实验方法 | 第44-49页 |
2.2.1 南极磷虾总脂的提取 | 第44页 |
2.2.2 柱层析分离纯化PC | 第44-45页 |
2.2.3 检测分析方法 | 第45-46页 |
2.2.4 磷脂酰丝氨酸合成的工艺优化 | 第46-48页 |
2.2.5 提取条件的选择 | 第48-49页 |
2.3 结果与讨论 | 第49-59页 |
2.3.1 南极磷虾总脂的成分分析 | 第49-50页 |
2.3.2 鱿鱼卵PC的柱层析分离纯化 | 第50-51页 |
2.3.3 工艺条件的优化 | 第51-58页 |
2.3.4 提取方法的比较 | 第58-59页 |
2.4 小结 | 第59-60页 |
3 磷脂组成差异对磷脂酶D催化合成磷脂酰丝氨酸的影响 | 第60-70页 |
引言 | 第60页 |
3.1 材料仪器 | 第60-61页 |
3.1.1 材料与试剂 | 第60-61页 |
3.1.2 仪器与设备 | 第61页 |
3.2 实验方法 | 第61-63页 |
3.2.1 柱层析分离纯化PC和PE | 第61页 |
3.2.2 不同浓度的PC、PE转化PS | 第61-62页 |
3.2.3 检测分析方法 | 第62-63页 |
3.3 结果与讨论 | 第63-69页 |
3.3.1 五种原料PC的脂肪酸组成 | 第63-64页 |
3.3.2 PC及PE纯度测定 | 第64-65页 |
3.3.3 底物PC浓度对PS合成率的影响 | 第65-66页 |
3.3.4 脂肪酸连接方式对PS合成的影响 | 第66-67页 |
3.3.5 磷脂极性头部对PS合成的影响 | 第67页 |
3.3.6 脂肪酸组成差异对PS合成的影响 | 第67-69页 |
3.4 小结 | 第69-70页 |
4 结论 | 第70-71页 |
5 本论文创新点 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-78页 |
附录 | 第78-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
个人简历 | 第80页 |
在学期间发表的学术论文 | 第80页 |