| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-26页 |
| 1 单增李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)的研究 | 第13-21页 |
| 1.1 单增李斯特菌的特性 | 第13-14页 |
| 1.1.1 形态及培养特性 | 第13页 |
| 1.1.2 单增李斯特菌的生化特性 | 第13-14页 |
| 1.1.3 单增李斯特菌的抗性 | 第14页 |
| 1.2 单增李斯特菌的抗原及其分型 | 第14页 |
| 1.3 毒力因子 | 第14-16页 |
| 1.3.1 hlyA基因(李斯特菌溶血素O基因) | 第15页 |
| 1.3.2 actA基因 | 第15页 |
| 1.3.3 prfA基因(转录激活调节蛋白基因) | 第15页 |
| 1.3.4 iap基因 | 第15页 |
| 1.3.5 plcB基因(磷酸脂酶C基因) | 第15-16页 |
| 1.3.6 内化素 | 第16页 |
| 1.3.7 表面蛋白P104 | 第16页 |
| 1.4 单增李斯特菌流行病学 | 第16-18页 |
| 1.4.1 分布 | 第16页 |
| 1.4.2 致病机理 | 第16-17页 |
| 1.4.3 易感人群 | 第17-18页 |
| 1.4.4 流行情况 | 第18页 |
| 1.5 单增李斯特菌的快速检测方法 | 第18-21页 |
| 1.5.1 传统分离鉴定法 | 第18-19页 |
| 1.5.2 免疫学检测方法 | 第19-20页 |
| 1.5.3 分子生物学方法 | 第20-21页 |
| 2 量子点的研究现状 | 第21-26页 |
| 2.1 量子点性质 | 第21-22页 |
| 2.1.1 量子尺寸效应 | 第22页 |
| 2.1.2 表面效应 | 第22页 |
| 2.1.3 宏观量子隧道效应 | 第22页 |
| 2.2 量子点的发光机制及光学特性 | 第22-23页 |
| 2.2.1 宽的吸收峰 | 第22页 |
| 2.2.2 窄的发射峰 | 第22-23页 |
| 2.2.3 宽大的斯托克斯位移 | 第23页 |
| 2.2.4 光稳定性好 | 第23页 |
| 2.2.5 亮度 | 第23页 |
| 2.3 量子点的应用现状 | 第23-25页 |
| 2.3.1 新型纳米荧光探针 | 第24页 |
| 2.3.2 量子点在生物分析中的应用 | 第24页 |
| 2.3.3 量子点在医学成像中的应用 | 第24-25页 |
| 2.4 前景展望 | 第25-26页 |
| 第二章 单增李斯特菌多克隆抗体的制备与纯化 | 第26-36页 |
| 2.1 材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 试验菌株 | 第26页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第26页 |
| 2.1.3 培养基 | 第26页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第27页 |
| 2.2 主要试剂的配制 | 第27-28页 |
| 2.2.1 ELISA溶液的配制 | 第27页 |
| 2.2.2 蛋白含量测定试剂的配制 | 第27-28页 |
| 2.2.3 SDS-PAGE缓冲液的配制 | 第28页 |
| 2.3 动物饲养与处理 | 第28页 |
| 2.4 试验方法 | 第28-31页 |
| 2.4.1 抗原的制备 | 第28-29页 |
| 2.4.2 免疫方案 | 第29页 |
| 2.4.3 间接ELISA检测抗体产生的效价 | 第29-30页 |
| 2.4.4 抗体的产生进程 | 第30页 |
| 2.4.5 抗体的纯化 | 第30-31页 |
| 2.5 结果与分析 | 第31-35页 |
| 2.5.1 抗原灭活的条件确定 | 第31-32页 |
| 2.5.2 抗体产生进程 | 第32页 |
| 2.5.3 间接ELISA测抗体效价 | 第32-33页 |
| 2.5.4 抗体纯度的鉴定 | 第33页 |
| 2.5.5 抗体浓度的确定 | 第33-34页 |
| 2.5.6 抗体纯化后的效价 | 第34-35页 |
| 2.6 讨论 | 第35-36页 |
| 2.6.1 抗体的产生 | 第35页 |
| 2.6.2 间接ELISA方法 | 第35页 |
| 2.6.3 抗体的纯化 | 第35页 |
| 2.6.4 SDS-PAGE的要求 | 第35-36页 |
| 第三章 间接ELISA条件的优化 | 第36-51页 |
| 3.1 材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 抗体 | 第36页 |
| 3.1.2 菌株来源 | 第36页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第36-37页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第37页 |
| 3.1.5 ELISA试剂 | 第37页 |
| 3.2 方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 间接—ELISA最佳工作条件确定 | 第37-39页 |
| 3.2.2 特异性实验 | 第39页 |
| 3.2.3 单增李斯特菌的检测限 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-48页 |
| 3.3.1 间接—ELISA最佳工作条件确定 | 第39-45页 |
| 3.3.2 特异性实验 | 第45-48页 |
| 3.3.3 检测限 | 第48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 3.5 讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 荧光抗体的制备及初步研究 | 第51-72页 |
| 4.1 材料 | 第51页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第51页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第51页 |
| 4.2 方法 | 第51-54页 |
| 4.2.1 主要试剂的配制 | 第51页 |
| 4.2.2 CdS量子点的合成 | 第51-52页 |
| 4.2.3 CdS量子点的TEM表征分析 | 第52-53页 |
| 4.2.4 CdS量子点的紫外吸收分析 | 第53页 |
| 4.2.5 CdS量子点的荧光光谱分析 | 第53页 |
| 4.2.6 CdS量子点与单增李斯特菌多克隆抗体IgG偶联 | 第53页 |
| 4.2.7 偶联CdS量子点单增李斯特菌多克隆抗体的检测 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与分析 | 第54-69页 |
| 4.3.1 CdS量子点的TEM表征分析 | 第54页 |
| 4.3.2 UV-vis分析 | 第54-55页 |
| 4.3.3 方法一CdS量子点制备条件的优化 | 第55-64页 |
| 4.3.4 方法二CdS量子点制备条件的优化 | 第64-65页 |
| 4.3.5 CdS量子点与单增李斯特菌都克隆抗体IgG偶联 | 第65-68页 |
| 4.3.6 偶联CdS量子点的单增李斯特菌多克隆抗体的检测 | 第68-69页 |
| 4.4 讨论 | 第69-72页 |
| 4.4.1 CdS量子点的制备 | 第69页 |
| 4.4.2 CdS量子点与单增李斯特菌多克隆抗体的偶联 | 第69-70页 |
| 4.4.3 检测方法 | 第70-72页 |
| 结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 附录 | 第80页 |
