| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 安络小皮伞概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 安络小皮伞研究现状 | 第12页 |
| 1.1.2 安络小皮伞的药理药效学研究 | 第12-13页 |
| 1.2 微生物诱变选育 | 第13-14页 |
| 1.3 液体发酵技术概述 | 第14页 |
| 1.4 镇痛活性概述 | 第14-16页 |
| 1.4.1 镇痛活性国内外研究现状 | 第14-15页 |
| 1.4.2 常规镇痛机制研究 | 第15-16页 |
| 1.5 抗抑郁活性概述 | 第16-18页 |
| 1.5.1 抑郁症概述 | 第16页 |
| 1.5.2 抗抑郁的发病机制 | 第16-18页 |
| 1.6 立题意义及研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 安络小皮伞高产菌株诱变选育 | 第20-28页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 菌种 | 第20页 |
| 2.1.2 仪器 | 第20页 |
| 2.1.3 试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.4 培养基 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 诱变方法 | 第21-22页 |
| 2.2.2 有效成分确定所需溶液的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.3 安络小皮伞有效成分的确定 | 第23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-26页 |
| 2.3.1 硫酸二乙酯诱变 | 第23-24页 |
| 2.3.2 亚硝酸钠诱变 | 第24-25页 |
| 2.3.3 诱变菌株遗传稳定性考察 | 第25-26页 |
| 2.3.4 安络小皮伞有效成分的确定 | 第26页 |
| 2.4 本章小结 | 第26-28页 |
| 第三章 高产菌株 T08 发酵工艺优化 | 第28-54页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第28页 |
| 3.1.1 菌种 | 第28页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第28页 |
| 3.1.4 初始培养基 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-32页 |
| 3.2.1 培养方法 | 第28页 |
| 3.2.2 菌丝体干重测定方法 | 第28页 |
| 3.2.3 菌丝体主成分含量测定方法 | 第28-30页 |
| 3.2.4 发酵培养基的优化 | 第30-31页 |
| 3.2.5 5L 发酵罐发酵条件优化 | 第31-32页 |
| 3.2.6 100L 发酵罐放大实验 | 第32页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第32-51页 |
| 3.3.1 培养基优化 | 第32-42页 |
| 3.3.2 5L 发酵罐发酵条件优化 | 第42-50页 |
| 3.3.3 100L 发酵罐放大实验 | 第50-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-54页 |
| 第四章 高产菌株 T08 镇痛活性相关研究 | 第54-74页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第54页 |
| 4.1.1 试剂 | 第54页 |
| 4.1.2 仪器 | 第54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 有效部位的提取 | 第54页 |
| 4.2.2 醋酸诱导扭体实验 | 第54-55页 |
| 4.2.3 福尔马林致痛实验 | 第55页 |
| 4.2.4 热板实验 | 第55页 |
| 4.2.5 自主活动实验 | 第55-56页 |
| 4.2.6 平衡转棒实验 | 第56页 |
| 4.2.7 镇痛机制研究 | 第56页 |
| 4.2.8 单胺类水平测定 | 第56-57页 |
| 4.2.9 蛋白印迹实验 | 第57页 |
| 4.2.10 数据统计处理 | 第57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-70页 |
| 4.3.1 醋酸诱导扭体实验结果 | 第57-58页 |
| 4.3.2 福尔马林诱导实验结果 | 第58页 |
| 4.3.3 热板实验 | 第58-59页 |
| 4.3.4 自主活动实验 | 第59-60页 |
| 4.3.5 平衡转棒实验 | 第60页 |
| 4.3.6 镇痛活性机制探索 | 第60-64页 |
| 4.3.7 单胺类水平测定结果 | 第64-68页 |
| 4.3.8 蛋白印迹实验结果 | 第68-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-74页 |
| 第五章 代谢多糖组分抗抑郁活性研究 | 第74-100页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第74页 |
| 5.1.1 胞外多糖 | 第74页 |
| 5.1.2 仪器设备 | 第74页 |
| 5.1.3 试剂 | 第74页 |
| 5.1.4 实验动物 | 第74页 |
| 5.2 实验方法 | 第74-78页 |
| 5.2.1 小鼠自主活动实验 | 第74-75页 |
| 5.2.2 平衡转棒实验 | 第75页 |
| 5.2.3 初期安全性评价 | 第75页 |
| 5.2.4 小鼠悬尾不动实验 | 第75-76页 |
| 5.2.5 小鼠强迫游泳实验 | 第76页 |
| 5.2.6 小鼠 5-HTP 诱导甩头实验 | 第76页 |
| 5.2.7 小鼠利血平实验 | 第76页 |
| 5.2.8 小鼠 RES 诱导蛋白印迹 | 第76-77页 |
| 5.2.9 大鼠慢性应激抑郁症(CUMS)模型建立 | 第77页 |
| 5.2.10 CUMS 模型糖水消耗实验 | 第77页 |
| 5.2.11 CUMS 模型悬尾不动实验 | 第77页 |
| 5.2.12 CUMS 模型强迫游泳实验 | 第77页 |
| 5.2.13 CUMS 模型单胺类水平测定 | 第77-78页 |
| 5.2.14 CUMS 模型蛋白印迹 | 第78页 |
| 5.2.15 统计学处理 | 第78页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第78-96页 |
| 5.3.1 自主活动实验结果 | 第78-79页 |
| 5.3.2 平衡转棒实验 | 第79-80页 |
| 5.3.3 初期安全性评价 | 第80-81页 |
| 5.3.4 小鼠悬尾不动实验 | 第81-82页 |
| 5.3.5 小鼠强迫游泳实验 | 第82页 |
| 5.3.6 小鼠 5-HTP 诱导实验 | 第82-83页 |
| 5.3.7 小鼠利血平诱导实验 | 第83-86页 |
| 5.3.8 小鼠 RES 诱导蛋白印迹结果 | 第86-87页 |
| 5.3.9 大鼠 CUMS 模型体重变化趋势 | 第87-88页 |
| 5.3.10 大鼠 CUMS 模型蔗糖偏适度结果 | 第88-89页 |
| 5.3.11 大鼠 CUMS 模型悬尾实验结果 | 第89-90页 |
| 5.3.12 大鼠 CUMS 模型强迫游泳实验结果 | 第90页 |
| 5.3.13 大鼠 CUMS 模型单胺类水平测定结果 | 第90-95页 |
| 5.3.14 大鼠 CUMS 模型蛋白印迹结果 | 第95-96页 |
| 5.4 本章小结 | 第96-100页 |
| 第六章 全文工作总结 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-112页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第112-114页 |
| 致谢 | 第114页 |
