| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 0 前言 | 第13-26页 |
| 0.1 水产品中药物残留免疫检测现状 | 第13-17页 |
| 0.1.1 水产品中药物残留检测现状 | 第13-14页 |
| 0.1.2 药物残留免疫检测应用进展 | 第14-17页 |
| 0.2 免疫检测基质效应概述 | 第17-21页 |
| 0.2.1 免疫检测基质效应定义 | 第17-18页 |
| 0.2.2 免疫检测基质效应研究现状 | 第18-21页 |
| 0.3 免疫检测基质效应的评价 | 第21-23页 |
| 0.3.1 免疫检测定性定量测定 | 第22页 |
| 0.3.2 免疫检测消除方法 | 第22-23页 |
| 0.4 研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 0.5 本论文的技术路线 | 第25-26页 |
| 1 三种典型性鲆鲽鱼主要干扰基质组分的识别和判断 | 第26-44页 |
| 1.1 引言 | 第26页 |
| 1.2 实验材料 | 第26-28页 |
| 1.2.1 主要试剂原料 | 第26-27页 |
| 1.2.2 主要仪器设备 | 第27页 |
| 1.2.3 溶液配制 | 第27-28页 |
| 1.3 主要方法 | 第28-31页 |
| 1.3.1 鱼肉粗提溶液的制备 | 第28页 |
| 1.3.2 Sephadex G-100 柱层析分离鱼肉蛋白 | 第28-29页 |
| 1.3.3 鱼肉蛋白溶液的聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第29页 |
| 1.3.4 ELISA 操作 | 第29-31页 |
| 1.4 实验结果与分析 | 第31-43页 |
| 1.4.1 鲆鲽鱼类中蛋白质对诺氟沙星免疫检测干扰作用评价 | 第31-39页 |
| 1.4.2 鲆鲽鱼类离子种类对诺氟沙星免疫检测干扰作用评价 | 第39-41页 |
| 1.4.3 不同 pH 值对诺氟沙星免疫检测影响 | 第41-42页 |
| 1.4.4 不同离子强度对诺氟沙星免疫检测影响 | 第42-43页 |
| 1.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 2 蛋白质影响免疫检测过程机理探究 | 第44-56页 |
| 2.1 引言 | 第44页 |
| 2.2 实验原料 | 第44-46页 |
| 2.2.1 主要试剂原料 | 第44-45页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第45-46页 |
| 2.2.3 溶液配制 | 第46页 |
| 2.3 主要方法 | 第46-49页 |
| 2.3.1 免疫印迹操作 | 第46-48页 |
| 2.3.2 ELISA 操作 | 第48-49页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第49-54页 |
| 2.4.1 免疫印迹法检测鲆鲽鱼类蛋白质与一抗二抗的结合作用 | 第49-51页 |
| 2.4.2 免疫印迹法检测鲆鲽鱼类蛋白质与不同免疫球蛋白的结合作用 | 第51-52页 |
| 2.4.3 鲆鲽鱼类蛋白质对诺氟沙星 ci-ELISA 干扰过程研究 | 第52-54页 |
| 2.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 3 水产品免疫检测基质效应存在的普遍性验证 | 第56-64页 |
| 3.1 引言 | 第56页 |
| 3.2 实验原料 | 第56-57页 |
| 3.2.1 主要试剂原料 | 第56页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第56-57页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第57页 |
| 3.3 主要方法 | 第57-58页 |
| 3.3.1 不同来源鱼虾基质组分的提取及其对 ELISA 影响 | 第57页 |
| 3.3.2 免疫印迹法检测不同来源鱼虾蛋白基质与抗体作用 | 第57-58页 |
| 3.3.3 不同提取方法提取鱼肉蛋白 | 第58页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第58-63页 |
| 3.4.1 五种水产品中复杂化学基质对诺氟沙星 ci-ELISA 影响 | 第58-60页 |
| 3.4.2 免疫印迹法检测五种水产品蛋白质与抗体的作用 | 第60-61页 |
| 3.4.3 不同提取方法对鱼肉蛋白提取的影响 | 第61-63页 |
| 3.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 4 牙鲆鱼中干扰蛋白质的分离纯化及性质研究 | 第64-78页 |
| 4.1 引言 | 第64页 |
| 4.2 实验材料 | 第64-66页 |
| 4.2.1 主要试剂原料 | 第64-65页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第65页 |
| 4.2.3 溶液配制 | 第65-66页 |
| 4.3 主要方法 | 第66-67页 |
| 4.3.1 硫酸铵分级沉淀 | 第66页 |
| 4.3.2 DEAE Sepharose-CL6B 阴离子交换层析 | 第66-67页 |
| 4.3.3 分离蛋白对诺氟沙星 ci-ELISA 检测过程的影响 | 第67页 |
| 4.3.4 双向电泳 | 第67页 |
| 4.3.5 蛋白质性质研究 | 第67页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第67-77页 |
| 4.4.1 硫酸铵分级沉淀对干扰蛋白初步分离 | 第67-68页 |
| 4.4.2 DEAE Sepharose-CL6B 阴离子交换层析凝胶柱进一步分离干扰蛋白 | 第68-70页 |
| 4.4.3 纯化蛋白对诺氟沙星 ci-ELISA 检测过程的影响 | 第70-72页 |
| 4.4.4 干扰蛋白质性质研究 | 第72-77页 |
| 4.5 本章小结 | 第77-78页 |
| 5 论文总结 | 第78-80页 |
| 6 论文的创新性 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88-89页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第89-90页 |
