中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
第1章 绪论 | 第11-21页 |
1.1 肉桂醛概述 | 第11页 |
1.2 肉桂醛的合成方法 | 第11-13页 |
1.2.1 天然提取 | 第11-12页 |
1.2.2 分子氧催化氧化法 | 第12页 |
1.2.3 近临界水合成法 | 第12页 |
1.2.4 羟醛缩合法 | 第12-13页 |
1.3 肉桂醛抑菌活性的研究进展 | 第13-15页 |
1.3.1 单一抑菌活性研究 | 第13-14页 |
1.3.2 肉桂醛的协同抑菌活性研究 | 第14-15页 |
1.4 肉桂醛的抑菌机制研究现状 | 第15页 |
1.5 基因芯片技术简介 | 第15-19页 |
1.5.1 基本原理 | 第16页 |
1.5.2 基因芯片分类 | 第16-17页 |
1.5.3 基因芯片技术的关键环节 | 第17-19页 |
1.6 用基因芯片研究肉桂醛抑菌机制的优势 | 第19页 |
1.7 前景与展望 | 第19-20页 |
1.8 本研究的目的、意义及内容 | 第20-21页 |
1.8.1 研究目的及意义 | 第20页 |
1.8.2 研究内容 | 第20-21页 |
第2章 植物源防腐剂的筛选和肉桂醛协同抑菌活性研究 | 第21-31页 |
2.1 引言 | 第21-22页 |
2.2 材料与设备 | 第22页 |
2.2.1 试剂与菌种 | 第22页 |
2.2.2 仪器设备 | 第22页 |
2.3 实验方法 | 第22-24页 |
2.3.1 最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第22-23页 |
2.3.2 协同抑菌实验 | 第23页 |
2.3.3 杀菌曲线测定实验 | 第23-24页 |
2.3.4 细胞毒性实验 | 第24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-30页 |
2.4.1 最低抑菌浓度(MIC)测定结果 | 第24-27页 |
2.4.2 协同抑菌实验结果 | 第27-28页 |
2.4.3 时间-杀菌曲线 | 第28-30页 |
2.4.4 细胞毒性 | 第30页 |
2.5 本章小结 | 第30-31页 |
第3章 肉桂醛对细菌细胞膜的影响 | 第31-45页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 材料与设备 | 第31-32页 |
3.2.1 主要材料 | 第31-32页 |
3.2.2 仪器设备 | 第32页 |
3.3 试验方法 | 第32-34页 |
3.3.1 菌悬液紫外吸收的测定 | 第32页 |
3.3.2 菌悬液电导率的测定 | 第32-33页 |
3.3.3 菌悬液中β-半乳糖苷酶活力的测定 | 第33页 |
3.3.4 扫描电镜观察 | 第33页 |
3.3.5 透射电镜观察 | 第33-34页 |
3.4 结果与讨论 | 第34-43页 |
3.4.1 肉桂醛对细菌细胞膜完整性的影响 | 第34-38页 |
3.4.2 肉桂醛对细菌细胞膜通透性的影响 | 第38-40页 |
3.4.3 肉桂醛对细菌微观形态影响 | 第40-43页 |
3.5 本章小结 | 第43-45页 |
第4章 肉桂醛对大肠杆菌 ATCC 8735 基因表达谱的影响 | 第45-68页 |
4.1 引言 | 第45页 |
4.2 材料与设备 | 第45-47页 |
4.2.1 材料 | 第45-47页 |
4.2.2 主要仪器设备 | 第47页 |
4.3 实验方法 | 第47-59页 |
4.3.1 基因芯片实验 | 第47-52页 |
4.3.2 Western-blot 实验 | 第52-55页 |
4.3.3 RT-PCR 实验 | 第55-59页 |
4.4 结果与讨论 | 第59-67页 |
4.4.1 肉桂醛对大肠杆菌转录组的影响 | 第59-65页 |
4.4.2 Western-blot 验证芯片结果 | 第65-66页 |
4.4.3 RT-PCR 验证芯片结果 | 第66-67页 |
4.5 本章小结 | 第67-68页 |
第5章 结论 | 第68-70页 |
5.1 全文结论 | 第68页 |
5.2 创新点 | 第68-70页 |
附录 1 PCR 实验中涉及的基因序列 | 第70-74页 |
附录 2 以 1.5 倍差异表达为显著判断标准筛选的基因 | 第74-81页 |
参考文献 | 第81-89页 |
导师简介 | 第89-91页 |
作者简介及科研成果 | 第91-92页 |
致谢 | 第92页 |