摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
主要缩略词说明 | 第11-13页 |
1 绪论 | 第13-20页 |
1.1 研究背景 | 第13-14页 |
1.2 马氏珠母贝的研究概况 | 第14页 |
1.3 多糖的研究进展 | 第14-19页 |
1.3.1 多糖的提取 | 第14-15页 |
1.3.2 多糖的分离纯化 | 第15-16页 |
1.3.3 多糖结构的测定 | 第16-18页 |
1.3.4 多糖的生理活性 | 第18-19页 |
1.4 研究的主要内容及目的意义 | 第19-20页 |
1.4.1 研究的主要内容 | 第19页 |
1.4.2 研究的目的意义 | 第19-20页 |
2 马氏珠母贝多糖分离纯化及其理化特性 | 第20-38页 |
2.1 引言 | 第20页 |
2.2 材料与仪器 | 第20-21页 |
2.2.1 实验材料 | 第20页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第20-21页 |
2.3 实验方法 | 第21-25页 |
2.3.1 马氏珠母贝多糖的提取 | 第21页 |
2.3.2 DEAE-52纤维素色谱法分离 | 第21-22页 |
2.3.3 Sephadex G-100凝胶柱层析色谱法分离 | 第22页 |
2.3.4 马氏珠母贝粗多糖及其纯化组分的理化性质分析 | 第22-25页 |
2.4 结果与分析 | 第25-36页 |
2.4.1 马氏珠母贝多糖DEAE-52纤维素色谱分离结果 | 第25-28页 |
2.4.2 马氏珠母贝多糖葡聚糖凝胶色谱法纯化结果 | 第28-29页 |
2.4.3 马氏珠母贝多糖理化特性分析 | 第29-36页 |
2.5 本章小结 | 第36-38页 |
3 马氏珠母贝多糖的结构分析 | 第38-60页 |
3.1 引言 | 第38页 |
3.2 材料与仪器 | 第38-39页 |
3.2.1 实验材料 | 第38页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第38-39页 |
3.3 实验方法 | 第39-41页 |
3.3.1 多糖纯度和分子量的测定 | 第39页 |
3.3.2 紫外光谱扫描 | 第39页 |
3.3.3 单糖组成分析 | 第39-40页 |
3.3.4 IR | 第40页 |
3.3.5 高碘酸氧化和Smith降解 | 第40页 |
3.3.6 NMR | 第40-41页 |
3.3.7 糖肽键类型的测定 | 第41页 |
3.3.8 刚果红试验 | 第41页 |
3.4 结果与分析 | 第41-59页 |
3.4.1 多糖纯度和分子量的测定 | 第41页 |
3.4.2 紫外扫描光谱 | 第41-42页 |
3.4.3 单糖组成分析 | 第42-45页 |
3.4.4 IR光谱 | 第45-48页 |
3.4.5 高碘酸氧化和Smith降解 | 第48-52页 |
3.4.6 NMR | 第52-57页 |
3.4.7 糖肽键连接类型 | 第57-58页 |
3.4.8 刚果红试验 | 第58-59页 |
3.5 本章小结 | 第59-60页 |
4 马氏珠母贝多糖体外抗氧化活性的研究 | 第60-69页 |
4.1 引言 | 第60-61页 |
4.2 材料与仪器 | 第61页 |
4.2.1 实验材料 | 第61页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第61页 |
4.3 实验方法 | 第61-62页 |
4.3.1 羟基自由基清除活性的测定 | 第61页 |
4.3.2 超氧阴离子自由基清除活性的测定 | 第61-62页 |
4.3.3 DPPH自由基清除活性的测定 | 第62页 |
4.3.4 过氧化氢清除活性的测定 | 第62页 |
4.3.5 还原能力的测定 | 第62页 |
4.4 结果与分析 | 第62-67页 |
4.4.1 马氏珠母贝多糖清除羟基自由基的活性 | 第62-63页 |
4.4.2 马氏珠母贝多糖清除超氧阴离子自由基的活性 | 第63-64页 |
4.4.3 马氏珠母贝多糖清除DPPH自由基的活性 | 第64-65页 |
4.4.4 马氏珠母贝多糖清除过氧化氢的活性 | 第65-66页 |
4.4.5 马氏珠母贝多糖的还原能力 | 第66-67页 |
4.5 本章小结 | 第67-69页 |
5 结论与展望 | 第69-71页 |
5.1 结论 | 第69-70页 |
5.2 展望 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
作者简介 | 第81-82页 |
导师简介 | 第82页 |