| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-48页 |
| 1.1 选题的目的和意义 | 第12-13页 |
| 1.2 文献综述 | 第13-45页 |
| 1.2.1 邻苯二甲酸酯类增塑剂 | 第13-32页 |
| 1.2.2 荧光偏振 | 第32-39页 |
| 1.2.3 过氧化物酶体增殖物激活受体 | 第39-45页 |
| 1.3 研究内容 | 第45-48页 |
| 第二章 重组蛋白mPPARα-LBD*的制备 | 第48-66页 |
| 2.1 引言 | 第48-50页 |
| 2.2 材料与设备 | 第50-52页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第50页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第50页 |
| 2.2.3 溶液及培养基配制 | 第50-52页 |
| 2.3 实验方法 | 第52-59页 |
| 2.3.1 mPPARα-LBD*基因的克隆 | 第52-56页 |
| 2.3.2 表达载体pET28a-mPPARα-LBD*的构建 | 第56-57页 |
| 2.3.3 mPPARα-LBD*基因在大肠杆菌中的表达 | 第57-58页 |
| 2.3.4 重组蛋白mPPARα-LBD*的纯化及浓缩 | 第58-59页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第59-64页 |
| 2.4.1 目的基因的克隆及鉴定 | 第59页 |
| 2.4.2 克隆载体的构建及鉴定 | 第59-60页 |
| 2.4.3 表达载体的构建及鉴定 | 第60-62页 |
| 2.4.4 重组蛋白的表达、纯化 | 第62-63页 |
| 2.4.5 重组蛋白的鉴定 | 第63-64页 |
| 2.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第三章 PAEs多残留荧光偏振检测方法的建立 | 第66-86页 |
| 3.1 引言 | 第66-67页 |
| 3.2 材料与设备 | 第67页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第67页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第67页 |
| 3.3 实验方法 | 第67-73页 |
| 3.3.1 受体配体反应的荧光偏振分析 | 第67-68页 |
| 3.3.2 解离平衡常数的计算 | 第68-72页 |
| 3.3.3 受体分析法在白酒检测中的应用 | 第72-73页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第73-84页 |
| 3.4.1 荧光探针的筛选 | 第73-74页 |
| 3.4.2 mPPARα-LBD*结合配体活性的鉴定 | 第74-75页 |
| 3.4.3 荧光偏振分析条件的优化 | 第75-76页 |
| 3.4.4 PAEs亲和力的比较分析 | 第76-79页 |
| 3.4.5 检测参数的确定 | 第79-81页 |
| 3.4.6 基质效应的消除 | 第81-83页 |
| 3.4.7 白酒检测的准确性和精密度 | 第83-84页 |
| 3.5 本章小结 | 第84-86页 |
| 第四章 PAEs与mPPARα-LBD*相互作用的计算机模拟 | 第86-100页 |
| 4.1 引言 | 第86-89页 |
| 4.1.1 蛋白结构的模拟预测 | 第86页 |
| 4.1.2 分子对接 | 第86-89页 |
| 4.2 材料与设备 | 第89页 |
| 4.3 实验方法 | 第89-90页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第90-98页 |
| 4.4.1 同源建模改造mPPARα-LBD蛋白 | 第90-91页 |
| 4.4.2 PAEs与mPPARα-LBD*的分子对接 | 第91-94页 |
| 4.4.3 能量计算及线性构效关系模型的建立 | 第94-96页 |
| 4.4.4 基于结构比对的竞争模式分析 | 第96-98页 |
| 4.5 本章小结 | 第98-100页 |
| 第五章 结论与展望 | 第100-102页 |
| 5.1 主要研究结论 | 第100-101页 |
| 5.2 后续工作展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-122页 |
| 在学期间所取得的学术成果 | 第122-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 作者简介 | 第126页 |
