| 致谢 | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 目录 | 第10-14页 |
| 1 综述 | 第14-27页 |
| 1.1 生物胺概述 | 第14-18页 |
| 1.1.1 生物胺生理功能与毒性 | 第14-15页 |
| 1.1.2 生物胺的产生 | 第15-16页 |
| 1.1.3 影响生物胺的产生的因素 | 第16-18页 |
| 1.1.3.1 原料特性 | 第16-17页 |
| 1.1.3.2 微生物种类与数量 | 第17页 |
| 1.1.3.3 食品的贮藏环境 | 第17-18页 |
| 1.2 水产品与生物胺 | 第18-20页 |
| 1.2.1 几种重要海产品概述 | 第18-19页 |
| 1.2.2 常见海产品鱼类的生物胺种类和含量 | 第19页 |
| 1.2.3 常见海产品鱼类特征生物胺的分析 | 第19-20页 |
| 1.3 生物胺的检测技术 | 第20-23页 |
| 1.3.1 生物胺检测的限量标准 | 第20-21页 |
| 1.3.2 样品前处理 | 第21-22页 |
| 1.3.2.1 提取 | 第21页 |
| 1.3.2.2 除脂 | 第21页 |
| 1.3.2.3 净化 | 第21页 |
| 1.3.2.4 衍生 | 第21-22页 |
| 1.3.3 几种主要分析手段 | 第22-23页 |
| 1.3.3.1 高效液相色谱HPLC | 第22页 |
| 1.3.3.2 薄层色谱TLC | 第22-23页 |
| 1.3.3.3 毛细管电泳色谱CE | 第23页 |
| 1.3.3.4 生物胺检测新技术 | 第23页 |
| 1.4 水产品中生物胺产生的微生物机制研究 | 第23-24页 |
| 1.5 生物胺控制技术研究现状 | 第24-25页 |
| 1.6 论文研究主要内容、目的和意义 | 第25-27页 |
| 1.6.1 研究目的意义 | 第25页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第25-27页 |
| 2 生物胺检测方法的建立及前处理方法优化 | 第27-38页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第27-29页 |
| 2.2.1 主要实验材料与试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.2 实验所需溶液配制 | 第28页 |
| 2.2.3 样品 | 第28页 |
| 2.2.4 主要实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.3.1 前处理 | 第29页 |
| 2.3.1.1 提取 | 第29页 |
| 2.3.1.2 除脂 | 第29页 |
| 2.3.1.3 提取液的净化 | 第29页 |
| 2.3.1.4 衍生 | 第29页 |
| 2.3.2 色谱分析 | 第29-30页 |
| 2.3.2.1 超高压液相色谱(UPLC)条件 | 第30页 |
| 2.3.2.2 标准曲线绘制 | 第30页 |
| 2.3.2.3 检出限 | 第30页 |
| 2.3.2.4 回收率 | 第30页 |
| 2.3.3 正交试验筛选最佳超声波提取条件 | 第30-31页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第31-37页 |
| 2.4.1 生物胺色谱图与保留时间 | 第31页 |
| 2.4.2 生物胺线性实验 | 第31-32页 |
| 2.4.3 最低检测限的确定 | 第32页 |
| 2.4.4 样品加标回收率与精密度 | 第32-34页 |
| 2.4.5 超声辅助提取生物胺的参数确定 | 第34-37页 |
| 2.5 小结 | 第37-38页 |
| 3 新鲜海鱼的原料特性分析 | 第38-45页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.1 主要试剂与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.1.1 主要试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.1.2 主要仪器与设备 | 第39页 |
| 3.2.2 样品 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.3.1 菌落总数测定 | 第39页 |
| 3.3.2 TVB-N的测定 | 第39-40页 |
| 3.3.3 pH值的测定 | 第40页 |
| 3.3.4 水分的测定 | 第40页 |
| 3.3.5 粗蛋白的测定 | 第40页 |
| 3.3.6 粗脂肪的测定 | 第40页 |
| 3.3.7 灰分的测定 | 第40页 |
| 3.3.8 腐败微生物计数 | 第40页 |
| 3.3.9 生物胺检测 | 第40-41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 3.4.1 基本成分分析 | 第41页 |
| 3.4.2 腐败微生物分析结果 | 第41-42页 |
| 3.4.3 鲜度指标测定结果 | 第42-43页 |
| 3.4.4 原料初始生物胺测定 | 第43页 |
| 3.4.5 原料特性分析 | 第43-44页 |
| 3.5 小结 | 第44-45页 |
| 4 海洋鱼类贮藏过程中生物胺变化规律及特征生物胺分析 | 第45-63页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第45-47页 |
| 4.2.1 主要实验材料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.2 实验溶液配制 | 第46页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第46-47页 |
| 4.2.4 实验样品及前处理 | 第47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-48页 |
| 4.3.1 总挥发性盐基氮(T-VBN)测定 | 第47页 |
| 4.3.2 菌落总数测定 | 第47页 |
| 4.3.3 超高压液相色谱(UPLC)检测 | 第47-48页 |
| 4.3.3.1 提取 | 第47页 |
| 4.3.3.2 提取液的净化 | 第47-48页 |
| 4.3.3.3 衍生 | 第48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-62页 |
| 4.4.1 小黄鱼新鲜度及生物胺变化 | 第48-53页 |
| 4.4.1.1 不同温度下小黄鱼菌落总数(TVC)的变化 | 第48-49页 |
| 4.4.1.2 TVB-N变化 | 第49-50页 |
| 4.4.1.3 生物胺变化 | 第50-53页 |
| 4.4.1.4 生物胺与鲜度相关性分析 | 第53页 |
| 4.4.2 带鱼新鲜度及生物胺变化 | 第53-57页 |
| 4.4.2.1 TVC变化 | 第53-54页 |
| 4.4.2.2 TVBN变化 | 第54-55页 |
| 4.4.2.3 生物胺变化 | 第55-57页 |
| 4.4.2.4 生物胺变化与鲜度相关性 | 第57页 |
| 4.4.3 米鱼新鲜度及生物胺变化 | 第57-61页 |
| 4.4.3.1 TVC变化 | 第57-58页 |
| 4.4.3.2 TVBN变化 | 第58-59页 |
| 4.4.3.3 米鱼生物胺变化 | 第59-60页 |
| 4.4.3.4 生物胺变化与鲜度相关性 | 第60-61页 |
| 4.4.4 温度对生物胺的影响分析 | 第61-62页 |
| 4.5 小结 | 第62-63页 |
| 5 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 作者简介 | 第70页 |