摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-19页 |
1.1 牛奶中非法添加物检测方法研究进展 | 第11-14页 |
1.1.1 牛奶中非法添加物的种类及危害 | 第11-12页 |
1.1.2 牛奶中非法添加物的检测方法 | 第12-14页 |
1.2 牛奶中抗生素残留及检测方法研究进展 | 第14-16页 |
1.2.1 牛奶中抗生素残留的来源及危害 | 第14页 |
1.2.2 牛奶中抗生素残留的检测方法 | 第14-16页 |
1.3 分子印迹固相萃取技术研究进展 | 第16-18页 |
1.3.1 分子印迹固相萃取 | 第16-17页 |
1.3.2 分子印迹固相萃取在食品分析方面的应用 | 第17-18页 |
1.4 本论文的主要内容及研究意义 | 第18-19页 |
第2章 简便-高通量超声萃取/毛细管电泳法测定牛奶中的三聚氰胺 | 第19-27页 |
2.1 前言 | 第19页 |
2.2 实验部分 | 第19-21页 |
2.2.1 主要仪器与试剂 | 第19-20页 |
2.2.2 样品制备方法 | 第20页 |
2.2.3 电泳条件 | 第20-21页 |
2.3 结果与讨论 | 第21-26页 |
2.3.1 分离条件的选择 | 第21-22页 |
2.3.2 样品处理方法的选择 | 第22-23页 |
2.3.3 超声萃取的优化 | 第23-25页 |
2.3.4 标准曲线和灵敏度 | 第25页 |
2.3.5 方法精密度 | 第25-26页 |
2.3.6 样品测定和回收率 | 第26页 |
2.4 结论 | 第26-27页 |
第3章 分子印迹固相萃取/毛细管电泳法同时测定牛奶中的四环素残留 | 第27-39页 |
3.1 前言 | 第27页 |
3.2 实验部分 | 第27-29页 |
3.2.1 主要仪器与试剂 | 第27-28页 |
3.2.2 溶液的配制 | 第28页 |
3.2.3 分子印迹聚合物微球的制备 | 第28页 |
3.2.4 牛奶样品的制备 | 第28-29页 |
3.2.5 电泳条件 | 第29页 |
3.3 结果与讨论 | 第29-38页 |
3.3.1 分子印迹聚合物微球的制备 | 第29-30页 |
3.3.2 分子印迹固相萃取的优化 | 第30-32页 |
3.3.3 分子印迹聚合物微球的吸附选择性研究 | 第32页 |
3.3.4 分子印迹微球的吸附特性研究 | 第32-34页 |
3.3.5 分离条件的选择 | 第34-36页 |
3.3.6 标准曲线和方法灵敏度 | 第36页 |
3.3.7 方法精密度 | 第36页 |
3.3.8 样品分析和回收率测定 | 第36-38页 |
3.4 结论 | 第38-39页 |
第4章 分子印迹固相萃取/毛细管电泳法同时测定水中酚 | 第39-45页 |
4.1 前言 | 第39页 |
4.2 实验部分 | 第39-40页 |
4.2.1 主要仪器与试剂 | 第39页 |
4.2.2 对硝基苯酚印迹聚合物的制备 | 第39-40页 |
4.2.3 样品处理及固相萃取过程 | 第40页 |
4.2.4 电泳条件 | 第40页 |
4.3 结果与讨论 | 第40-44页 |
4.3.1 固相萃取条件的优化 | 第40-42页 |
4.3.2 选择性吸附与富集倍数 | 第42页 |
4.3.3 标准曲线、精密度、检出限 | 第42页 |
4.3.4 样品测定及加标回收率 | 第42-44页 |
4.4 结论 | 第44-45页 |
第5章 胶束电动色谱法同时分离测定绿豆芽中 5 种植物激素 | 第45-51页 |
5.1 前言 | 第45页 |
5.2 实验部分 | 第45-46页 |
5.2.1 主要仪器与试剂 | 第45页 |
5.2.2 样品制备 | 第45-46页 |
5.2.3 电泳条件 | 第46页 |
5.3 结果与讨论 | 第46-49页 |
5.3.1 分离条件的选择 | 第46-47页 |
5.3.2 标准曲线和灵敏度 | 第47-48页 |
5.3.3 方法精密度 | 第48页 |
5.3.4 样品测定和回收率 | 第48-49页 |
5.4 结论 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
攻读学位期间取得的科研成果 | 第59页 |