| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第9-24页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第9-11页 |
| 1.2 裂殖壶菌概况 | 第11-14页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌简介 | 第11页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌的应用 | 第11-13页 |
| 1.2.2.1 促进大脑发育 | 第12页 |
| 1.2.2.2 参与细胞构成 | 第12页 |
| 1.2.2.3 促进和维持视网膜的功能 | 第12页 |
| 1.2.2.4 改善机体免疫调节能力 | 第12页 |
| 1.2.2.5 作为饲料添加剂 | 第12-13页 |
| 1.2.3 裂殖壶菌藻粕肽的研究现状 | 第13页 |
| 1.2.3.1 裂殖壶菌藻粕肽的抑菌效果 | 第13页 |
| 1.2.3.2 裂殖壶菌藻粕肽的体表抗炎效果 | 第13页 |
| 1.2.4 裂殖壶菌的开发前景 | 第13-14页 |
| 1.3 常见的IBD模型 | 第14-16页 |
| 1.3.1 化学物质诱导型动物模型 | 第14-15页 |
| 1.3.1.1 DSS模型 | 第14-15页 |
| 1.3.1.2 Oxazolone模型 | 第15页 |
| 1.3.1.3 TNBS模型 | 第15页 |
| 1.3.1.4 乙酸模型 | 第15页 |
| 1.3.2 基因工程型动物模型 | 第15-16页 |
| 1.3.2.1 基因敲除模型 | 第15-16页 |
| 1.3.2.2 转基因模型 | 第16页 |
| 1.3.3 自发性动物模型 | 第16页 |
| 1.4 肠道炎症病情评价的常用方法 | 第16-18页 |
| 1.4.1 Clinical Score评价标准 | 第16-17页 |
| 1.4.2 H&E染色 | 第17页 |
| 1.4.3 Histological Score评分标准 | 第17页 |
| 1.4.4 炎症因子的PCR检测 | 第17-18页 |
| 1.5 活性肽的分析方法 | 第18-19页 |
| 1.5.1 UPLC/Q-TOF-MS | 第18-19页 |
| 1.5.2 常规质谱分析 | 第19页 |
| 1.5.3 核磁共振 | 第19页 |
| 1.6 海产品脱腥方法 | 第19-21页 |
| 1.6.1 活性炭吸附法 | 第19-20页 |
| 1.6.2 溶剂脱腥法 | 第20页 |
| 1.6.3 发酵脱腥法 | 第20-21页 |
| 1.7 微胶囊技术概述 | 第21页 |
| 1.8 课题研究的来源、目的及主要内容和创新性 | 第21-24页 |
| 1.8.1 课题研究的来源和目的 | 第21-22页 |
| 1.8.2 课题研究的内容 | 第22-23页 |
| 1.8.3 课题研究的创新性 | 第23-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-41页 |
| 2.1 实验仪器设备及试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验仪器设备表 | 第24-25页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第25-28页 |
| 2.2.1 实验材料及动物 | 第25页 |
| 2.2.2 实验试剂及药品 | 第25-27页 |
| 2.2.3 实验所需试剂的配制 | 第27-28页 |
| 2.2.3.1 藻粕酶解过程所需试剂溶液配制 | 第27页 |
| 2.2.3.2 小鼠肠道炎症实验过程中所需试剂溶液配制 | 第27页 |
| 2.2.3.3 琼脂糖电泳相关试剂配置 | 第27-28页 |
| 2.2.3.4 细胞培养过程所需试剂溶液配制 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-41页 |
| 2.3.1 酶解产物的提取方法 | 第28-29页 |
| 2.3.2 酶解产物活性成分的分析方法 | 第29-30页 |
| 2.3.3 DSS肠道炎症建模方法 | 第30页 |
| 2.3.4 肠炎小鼠的体重分析方法 | 第30页 |
| 2.3.5 肠炎小鼠的便血程度分析方法 | 第30-31页 |
| 2.3.6 肠道炎症小鼠的疾病临床评分方法 | 第31-32页 |
| 2.3.7 肠炎小鼠解剖及肠道预处理方法 | 第32页 |
| 2.3.8 肠道组织病理切片制作和H&E染色 | 第32-33页 |
| 2.3.9 提取肠黏膜RNA和反转录获得DNA | 第33-34页 |
| 2.3.10 炎症因子的PCR检测 | 第34-35页 |
| 2.3.11 炎症因子的Q-PCR检测 | 第35-36页 |
| 2.3.12 酶解产物对小鼠肥胖控制的作用 | 第36-37页 |
| 2.3.13 酶解产物对293T细胞扩增的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.13.1 细胞接板操作 | 第37页 |
| 2.3.13.2 MTT法检测细胞存活率 | 第37-38页 |
| 2.3.14 酶解产物中活性肽的预测及序列分析方法 | 第38页 |
| 2.3.15 酶解产物的活性炭脱腥处理方法 | 第38-39页 |
| 2.3.15.1 脱腥过程最佳活性炭用量的确定 | 第38-39页 |
| 2.3.15.2 脱腥过程最佳吸附时间的确定 | 第39页 |
| 2.2.15.3 UPLC-MS检测脱腥前后成分变化 | 第39页 |
| 2.3.16 酶解产物的微胶囊化处理方法 | 第39-41页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第41-66页 |
| 3.1 最佳酶解条件的确定 | 第41-42页 |
| 3.2 酶解产物对小鼠肠道炎症的作用 | 第42-52页 |
| 3.2.1 小鼠体重变化结果分析 | 第42-44页 |
| 3.2.2 小鼠便血情况结果分析 | 第44-45页 |
| 3.2.3 小鼠疾病临床评分结果分析 | 第45-46页 |
| 3.2.4 小鼠肠道形态结果分析 | 第46-47页 |
| 3.2.5 肠黏膜组织学病理形态结果分析 | 第47-49页 |
| 3.2.6 炎症因子PCR检测结果分析 | 第49-51页 |
| 3.2.7 炎症因子Q-PCR检测结果分析 | 第51-52页 |
| 3.3 酶解产物对肥胖控制效果 | 第52页 |
| 3.4 酶解产物对293T细胞增殖的影响 | 第52-56页 |
| 3.4.1 培养过程中细胞显微形态对比 | 第53-54页 |
| 3.4.2 不同时期细胞存活率结果 | 第54-56页 |
| 3.5 酶解产物中活性肽的预测 | 第56-60页 |
| 3.5.1 酶解产物中活性肽分子量预测 | 第56-59页 |
| 3.5.2 酶解产物中活性肽氨基酸序列预测 | 第59-60页 |
| 3.6 活性炭脱腥结果 | 第60-64页 |
| 3.6.1 活性炭脱腥最佳用量 | 第60-61页 |
| 3.6.2 活性炭脱腥最佳吸附时间 | 第61页 |
| 3.6.3 脱腥前后UPLC-MS成分比对 | 第61-64页 |
| 3.7 酶解产物微胶囊化结果 | 第64-66页 |
| 主要结论与展望 | 第66-68页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 附录1 | 第76-83页 |
| 附录2 | 第83-89页 |
| 个人简历 | 第89-90页 |
| 研究成果 | 第90页 |
