| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要缩略词表 | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 组胺与食品安全 | 第9-12页 |
| 1.1.1 组胺 | 第9-10页 |
| 1.1.2 组胺的限量标准 | 第10页 |
| 1.1.3 食品中的组胺 | 第10-12页 |
| 1.2 食品中组胺检测的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 高效液相色谱法 | 第12-13页 |
| 1.2.2 酶联免疫吸附法 | 第13页 |
| 1.2.3 毛细管电泳法 | 第13页 |
| 1.2.4 生物传感器法 | 第13-14页 |
| 1.2.5 薄层色谱法 | 第14页 |
| 1.3 HPTLC-SERS法测定食品中的组胺 | 第14-18页 |
| 1.3.1 表面增强拉曼散射光谱 | 第14-17页 |
| 1.3.2 HPTLC-SERS研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4 课题研究目的和意义 | 第18页 |
| 1.5 主要研究内容 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-24页 |
| 2.1 材料与设备 | 第19页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第19页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 溶液的制备 | 第19-20页 |
| 2.2.2 样品预处理 | 第20页 |
| 2.2.3 硅胶板的活化 | 第20页 |
| 2.2.4 银纳米粒子的制备与表征方法 | 第20-22页 |
| 2.2.5 HPTLC分离 | 第22页 |
| 2.2.6 目标物的衍生 | 第22页 |
| 2.2.7 荧光光密度法 | 第22-23页 |
| 2.2.8 SERS检测方法 | 第23页 |
| 2.2.9 鱼样品的HPLC检测 | 第23-24页 |
| 3 结果与讨论 | 第24-47页 |
| 3.1 HPTLC-FLD快速定量筛检组胺方法的建立 | 第24-26页 |
| 3.1.1 组胺的衍生化处理 | 第24页 |
| 3.1.2 荧光光密度扫描波长 | 第24-25页 |
| 3.1.3 色谱图和标准曲线 | 第25-26页 |
| 3.1.4 方法的检出限和定量限 | 第26页 |
| 3.2 SERS确证组胺衍生物分子 | 第26-34页 |
| 3.2.1 银胶的表征 | 第27-28页 |
| 3.2.2 薄层色谱板的选择 | 第28-29页 |
| 3.2.3 组胺衍生物HPTLC-FLD-SERS检测方法的建立 | 第29-32页 |
| 3.2.4 AgNPs制备方法的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.5 SERS激发光波长的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 NaCl诱导SERS可调机理解析 | 第34-41页 |
| 3.3.1 NaCl和其他电解质的比较 | 第34-35页 |
| 3.3.2 NaCl添加浓度对SERS的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.3 组胺SERS峰谱解析 | 第37-39页 |
| 3.3.4 NaCl选择性增强的机理分析 | 第39-41页 |
| 3.4 HPTLC-FLD-SERS检测方法在鱼样品中的应用 | 第41-47页 |
| 3.4.1 展开剂的选择 | 第41页 |
| 3.4.2 鱼样品的分析 | 第41-44页 |
| 3.4.3 方法验证 | 第44-47页 |
| 主要结论与展望 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第57页 |
