| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 1 绪论 | 第15-22页 |
| 1.1 美拉德反应的基本原理 | 第15-16页 |
| 1.2 美拉德反应产物的抗氧化活性 | 第16-19页 |
| 1.2.1 还原糖 | 第16-17页 |
| 1.2.2 氨基化合物 | 第17-18页 |
| 1.2.3 反应时间 | 第18页 |
| 1.2.4 反应温度 | 第18-19页 |
| 1.2.5 pH 值 | 第19页 |
| 1.3 本研究的立题背景及研究意义 | 第19-20页 |
| 1.4 本论文的主要研究内容 | 第20-22页 |
| 2 反应条件对美拉德反应进程的影响 | 第22-39页 |
| 引言 | 第22-23页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-28页 |
| 2.1.1 原料与试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.2 结果与分析 | 第28-37页 |
| 2.2.1 LC-MS 分析鉴定 -N-呋喃甲基氨基酸（FMAAs） | 第28-29页 |
| 2.2.2 糠氨酸（Furosine） | 第29-30页 |
| 2.2.3 羟甲基糠醛（HMF） | 第30-31页 |
| 2.2.4 中间产物（A294nm） | 第31-32页 |
| 2.2.5 褐变（A420nm） | 第32-33页 |
| 2.2.6 游离氨基含量 | 第33-34页 |
| 2.2.7 分子量分布 | 第34-36页 |
| 2.2.8 感官评价 | 第36-37页 |
| 本章小结 | 第37-39页 |
| 3 MRPs 的抗氧化活性及对大豆油脂质氧化的抑制作用 | 第39-52页 |
| 引言 | 第39页 |
| 3.1 材料与方法 | 第39-43页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第40页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-51页 |
| 3.2.1 DPPH 清除活性 | 第43-44页 |
| 3.2.2 还原力（FRAP） | 第44-45页 |
| 3.2.3 ABTS+·清除活性 | 第45-46页 |
| 3.2.4 过氧自由基清除活性（ORAC） | 第46-48页 |
| 3.2.5 Fe2+螯合活性 | 第48-49页 |
| 3.2.6 MRPs 对大豆油氧化的抑制作用 | 第49-51页 |
| 本章小结 | 第51-52页 |
| 4 MRPs 及其分离组分对 HepG2 细胞氧化损伤的修复作用 | 第52-68页 |
| 引言 | 第52-53页 |
| 4.1 材料与方法 | 第53-56页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.1.2 实验试剂与仪器设备 | 第53-54页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 4.2 结果与分析 | 第56-66页 |
| 4.2.1 MRPs 对 HepG2 细胞的毒性实验 | 第56-58页 |
| 4.2.2 HepG2 细胞氧化应激模型的构建 | 第58-59页 |
| 4.2.3 MRPs 对 HepG2 细胞氧化损伤修复的检测与评价 | 第59-62页 |
| 4.2.4 MRPs 的分离及其理化特性 | 第62-64页 |
| 4.2.5 MRPs 分离组分对 HepG2 氧化应激损伤的修复作用 | 第64-66页 |
| 本章小结 | 第66-68页 |
| 5 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68-69页 |
| 5.2 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历 | 第84页 |
| 攻读硕士期间已有的研究成果 | 第84-85页 |
| 附录 | 第85-91页 |
| 附录一：标准曲线 | 第85-86页 |
| 附录二：UV 光谱图 | 第86-87页 |
| 附录三：LC-MS 离子流图 | 第87-89页 |
| 附录四：MRPs 分离组分的凝胶色谱图 | 第89-91页 |
