摘要 | 第3-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
缩略符号说明 | 第12-17页 |
第一章 绪论 | 第17-39页 |
1.1 昆仑雪菊化学成分 | 第17-20页 |
1.1.1 黄酮及多酚类化合物 | 第18页 |
1.1.2 多糖类 | 第18页 |
1.1.3 苯丙素类 | 第18-19页 |
1.1.4 倍半萜类 | 第19页 |
1.1.5 炔类化合物 | 第19页 |
1.1.6 氨基酸及脂肪酸 | 第19页 |
1.1.7 挥发性成分 | 第19-20页 |
1.1.8 其它 | 第20页 |
1.2 多糖的提取、分离纯化 | 第20-23页 |
1.2.1 多糖的提取 | 第20-22页 |
1.2.2 多糖的分离纯化 | 第22-23页 |
1.3 总黄酮的提取、分离纯化 | 第23-25页 |
1.3.1 总黄酮的提取 | 第23-24页 |
1.3.2 黄酮类化合物的分离纯化 | 第24-25页 |
1.4 原花青素的提取、分离纯化 | 第25-27页 |
1.4.1 原花青素的提取 | 第25页 |
1.4.2 原花青素的分离纯化 | 第25-27页 |
1.5 昆仑雪菊生物活性 | 第27-30页 |
1.5.1 抗氧化作用 | 第27页 |
1.5.2 抗炎作用 | 第27页 |
1.5.3 抗菌抗病毒作用 | 第27-28页 |
1.5.4 降血脂作用 | 第28页 |
1.5.5 降血压作用 | 第28-29页 |
1.5.6 抗凝血作用 | 第29页 |
1.5.7 降血糖作用 | 第29-30页 |
1.6 本课题的立题背景和意义 | 第30-31页 |
1.7 主要研究内容 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-39页 |
第二章 昆仑雪菊多糖复合酶-超声辅助提取工艺优化及分离纯化 | 第39-57页 |
2.1 前言 | 第39-40页 |
2.2 材料与方法 | 第40-44页 |
2.2.1 主要材料与试剂 | 第40页 |
2.2.2 主要设备 | 第40页 |
2.2.3 复合酶-超声辅助提取工艺流程 | 第40-41页 |
2.2.4 复合酶-超声辅助提取工艺条件的确定 | 第41页 |
2.2.5 昆仑雪菊多糖含量、得率和纯度的测定 | 第41-42页 |
2.2.5.1 昆仑雪菊多糖含量的测定 | 第41-42页 |
2.2.5.2 昆仑雪菊多糖提取率的计算 | 第42页 |
2.2.5.3 昆仑雪菊多糖纯度的计算 | 第42页 |
2.2.6 加酶和超声技术对昆仑雪菊多糖结构的影响分析 | 第42页 |
2.2.7 昆仑雪菊多糖的分离纯化 | 第42-43页 |
2.2.8 昆仑雪菊多糖组分PⅡ光谱分析 | 第43页 |
2.2.9 昆仑雪菊多糖组分PⅡ相对分子质量及相对分子质量分布范围的测定 | 第43-44页 |
2.2.10 昆仑雪菊多糖组分PⅡ单糖组成分析 | 第44页 |
2.3 结果和分析 | 第44-54页 |
2.3.1 复合酶-超声辅助提取昆仑雪菊多糖最优工艺条件 | 第44-47页 |
2.3.2 不同提取方法对提取率和多糖结构的影响 | 第47-48页 |
2.3.3 昆仑雪菊多糖的分离纯化工艺条件及组分 | 第48-51页 |
2.3.4 昆仑雪菊多糖组分PⅡ的结构、相对分子质量分布及分子组成分析 | 第51-54页 |
2.4 本章小结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-57页 |
第三章 昆仑雪菊多糖生物活性研究 | 第57-77页 |
3.1 前言 | 第57-58页 |
3.2 材料与方法 | 第58-62页 |
3.2.1 主要材料与试剂 | 第58-59页 |
3.2.2 主要设备 | 第59页 |
3.2.3 昆仑雪菊多糖及昆仑雪菊多糖组分PⅡ的体外抗氧化性实验 | 第59-60页 |
3.2.4 昆仑雪菊多糖体内抗氧化实验 | 第60页 |
3.2.5 昆仑雪菊多糖抑菌实验 | 第60-61页 |
3.2.6 昆仑雪菊多糖及其组分PⅡ的体外抗肿瘤实验 | 第61-62页 |
3.2.7 昆仑雪菊多糖对CCl4致小鼠急性肝损伤的预防性作用研究 | 第62页 |
3.3 结果和分析 | 第62-73页 |
3.3.1 昆仑雪菊多糖体外抗氧化性 | 第62-64页 |
3.3.2 昆仑雪菊多糖体内抗氧化性 | 第64-66页 |
3.3.3 昆仑雪菊多糖抑菌性 | 第66页 |
3.3.4 昆仑雪菊多糖及组分PⅡ的体外肿瘤增殖抑制作用 | 第66-72页 |
3.3.5 昆仑雪菊多糖对CCl4致小鼠急性肝损伤的影响 | 第72-73页 |
3.4 本章小结 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-77页 |
第四章 昆仑雪菊总黄酮的超高压提取工艺优化及纯化 | 第77-97页 |
4.1 前言 | 第77页 |
4.2 材料与方法 | 第77-82页 |
4.2.1 主要材料与试剂 | 第77-78页 |
4.2.2 主要设备 | 第78页 |
4.2.3 昆仑雪菊总黄酮提取工艺流程 | 第78页 |
4.2.4 超高压法提取昆仑雪菊总黄酮工艺优化 | 第78-79页 |
4.2.5 昆仑雪菊总黄酮含量及纯度的测定 | 第79-80页 |
4.2.6 昆仑雪菊总黄酮系列定性试验 | 第80页 |
4.2.7 昆仑雪菊总黄酮分离纯化工艺的确定 | 第80-82页 |
4.3 结果与分析 | 第82-94页 |
4.3.1 超高压提取法最优工艺 | 第82-84页 |
4.3.2 响应曲面优化超高压提取法试验结果 | 第84-86页 |
4.3.3 不同提取方法提取昆仑雪菊总黄酮的提取效果比较 | 第86-87页 |
4.3.4 提取方法对昆仑雪菊总黄酮结构的影响 | 第87-89页 |
4.3.5 昆仑雪菊总黄酮分离纯化最优工艺 | 第89-94页 |
4.4 本章小结 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-97页 |
第五章 昆仑雪菊总黄酮生物活性研究 | 第97-113页 |
5.1 前言 | 第97页 |
5.2 材料与方法 | 第97-98页 |
5.2.1 主要材料与试剂 | 第97页 |
5.2.2 实验设备 | 第97页 |
5.2.3 昆仑雪菊总黄酮体外抗氧化试验 | 第97-98页 |
5.2.4 昆仑雪菊总黄酮体内抗氧化试验 | 第98页 |
5.2.5 昆仑雪菊总黄酮体外抑菌试验 | 第98页 |
5.2.6 昆仑雪菊总黄酮体外肿瘤增殖抑制作用试验 | 第98页 |
5.2.7 昆仑雪菊总黄酮对CCl4致小鼠急性肝损伤的保护作用研究 | 第98页 |
5.3 结果与讨论 | 第98-110页 |
5.3.1 昆仑雪菊总黄酮体外抗氧化性 | 第98-100页 |
5.3.2 昆仑雪菊总黄酮体内抗氧化性 | 第100-102页 |
5.3.3 昆仑雪菊总黄酮体外抑菌性 | 第102-103页 |
5.3.4 昆仑雪菊总黄酮体外对肿瘤细胞增殖抑制活性 | 第103-110页 |
5.3.5 昆仑雪菊总黄酮对CCl4致小鼠急性肝损伤的影响 | 第110页 |
5.4 本章小结 | 第110-111页 |
参考文献 | 第111-113页 |
第六章 昆仑雪菊原花青素的提取、纯化与生物活性 | 第113-145页 |
6.1 前言 | 第113页 |
6.2 材料与方法 | 第113-118页 |
6.2.1 主要材料与试剂 | 第113-114页 |
6.2.2 主要设备 | 第114页 |
6.2.3 超声波法提取昆仑雪菊原花青素工艺条件优化 | 第114页 |
6.2.4 昆仑雪菊原花青素含量及纯度测定 | 第114-115页 |
6.2.5 AB-8 纯化昆仑雪菊原花青素工艺条件的确定 | 第115-116页 |
6.2.6 昆仑雪菊原花青素体外抗氧化实验 | 第116页 |
6.2.7 昆仑雪菊原花青素体内抗氧化实验 | 第116页 |
6.2.8 昆仑雪菊原花青素抑菌实验 | 第116-117页 |
6.2.9 昆仑雪菊原花青素体外抗肿瘤实验 | 第117页 |
6.2.10 昆仑雪菊原花青素对CCl4致小鼠肝损伤的保护作用 | 第117页 |
6.2.11 昆仑雪菊原花青素延缓衰老实验 | 第117-118页 |
6.3 结果与分析 | 第118-140页 |
6.3.1 响应面优化超声波提取雪菊原花青素试验结果 | 第118-120页 |
6.3.2 昆仑雪菊原花青素提取工艺的提取效果比较 | 第120-121页 |
6.3.3 AB-8 大孔树脂分离纯化昆仑雪菊原花青素最优工艺 | 第121-125页 |
6.3.4 昆仑雪菊原花青素体外抗氧化活性及比较 | 第125-127页 |
6.3.5 昆仑雪菊原花青素体内抗氧化性及比较 | 第127-131页 |
6.3.6 昆仑雪菊原花青素体外抑菌性及比较 | 第131-133页 |
6.3.7 昆仑雪菊原花青素体外抗肿瘤活性及比较 | 第133-137页 |
6.3.8 昆仑雪菊原花青素对CCl4致小鼠急性肝损伤的预防性作用及比较 | 第137-139页 |
6.3.9 昆仑雪菊原花青素延缓衰老功效 | 第139-140页 |
6.4 本章小结 | 第140-142页 |
参考文献 | 第142-145页 |
主要结论与展望 | 第145-148页 |
论文创新点 | 第148-149页 |
致谢 | 第149-150页 |
攻读博士期间发表的论文和取得的学术成果 | 第150页 |