摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第12-24页 |
1.1 毒性金属铝及其概述 | 第12-14页 |
1.1.1 金属铝的污染现状及暴露途径 | 第12-13页 |
1.1.2 金属铝的致毒机制 | 第13-14页 |
1.2 缓解金属铝及其他毒性金属的干预手段 | 第14-18页 |
1.2.1 传统药物的干预途径 | 第14-15页 |
1.2.2 膳食干预途径 | 第15-17页 |
1.2.3 其他毒性金属的膳食干预手段 | 第17页 |
1.2.4 其他毒性金属的乳酸菌干预手段 | 第17-18页 |
1.3 乳酸菌缓解铝毒性的潜力 | 第18-22页 |
1.3.1 乳酸菌概述 | 第18页 |
1.3.2 乳酸菌生物减除金属铝的潜力 | 第18-20页 |
1.3.3 乳酸菌对肠道菌群及肠道屏障的调控 | 第20-21页 |
1.3.4 乳酸菌对神经行为学损伤动物模型的干预作用 | 第21-22页 |
1.4 论文立题背景及意义 | 第22-23页 |
1.5 论文的主要研究内容 | 第23-24页 |
第二章 缓解铝毒性作用乳酸菌的体外筛选 | 第24-44页 |
2.1 前言 | 第24页 |
2.2 材料与设备 | 第24-25页 |
2.2.1 实验材料与试剂 | 第24-25页 |
2.2.2 实验仪器与设备 | 第25页 |
2.3 实验方法 | 第25-28页 |
2.3.1 乳酸菌的培养 | 第25页 |
2.3.2 乳酸菌的铝吸附能力测定 | 第25-26页 |
2.3.3 乳酸菌对铝耐受能力的测定 | 第26页 |
2.3.4 乳酸菌对模拟胃肠液耐受能力的测定 | 第26页 |
2.3.5 乳酸菌抗氧化能力的测定 | 第26-27页 |
2.3.6 植物乳杆菌CCFM639产胞外多糖的测定 | 第27-28页 |
2.3.7 植物乳杆菌CCFM639全基因组样品的制备及测定 | 第28页 |
2.3.8 植物乳杆菌CCFM639响应铝暴露基团变化的傅里叶红外光谱观察 | 第28页 |
2.3.9 植物乳杆菌CCFM639响应铝暴露的电镜样品制备与观察 | 第28页 |
2.3.10 统计和分析数据 | 第28页 |
2.4 结果与讨论 | 第28-43页 |
2.4.1 乳酸菌对铝的吸附能力 | 第28-30页 |
2.4.2 乳酸菌对铝的耐受能力 | 第30-31页 |
2.4.3 乳酸菌对模拟胃肠液的耐受能力 | 第31-32页 |
2.4.4 乳酸菌的抗氧化能力 | 第32-35页 |
2.4.5 具有缓解铝毒性潜力菌株的综合能力分析 | 第35-36页 |
2.4.6 植物乳杆菌CCFM639产胞外多糖及基因簇分析 | 第36-41页 |
2.4.7 植物乳杆菌CCFM639响应铝暴露的表面基团变化及分析 | 第41-43页 |
2.5 本章小结 | 第43-44页 |
第三章 植物乳杆菌CCFM639对急慢性铝暴露动物模型毒性缓解作用的效果评价 | 第44-65页 |
3.1 前言 | 第44页 |
3.2 材料与设备 | 第44-45页 |
3.2.1 实验材料与试剂 | 第44-45页 |
3.2.2 实验仪器与设备 | 第45页 |
3.3 实验方法 | 第45-49页 |
3.3.1 口服乳酸菌的培养与制备 | 第45页 |
3.3.2 急性铝暴露小鼠实验设计 | 第45-46页 |
3.3.3 急性铝暴露小鼠粪便、血液和组织的铝含量测定 | 第46页 |
3.3.4 急性铝暴露小鼠血液和组织的生理生化指标的测定 | 第46页 |
3.3.5 急性铝暴露小鼠组织病理观察 | 第46页 |
3.3.6 慢性铝暴露小鼠实验设计 | 第46-47页 |
3.3.7 慢性铝暴露小鼠粪便、血液和组织的金属含量测定 | 第47页 |
3.3.8 慢性铝暴露小鼠血液和组织的生理生化指标的测定 | 第47页 |
3.3.9 慢性铝暴露小鼠组织病理观察 | 第47页 |
3.3.10 慢性铝暴露罗非鱼实验设计 | 第47页 |
3.3.11 含菌体罗非鱼饲料的制备 | 第47-48页 |
3.3.12 慢性铝暴露罗非鱼生长性能、存活率和饲料利用率的测定 | 第48-49页 |
3.3.13 慢性铝暴露罗非鱼粪便和组织中金属含量的测定 | 第49页 |
3.3.14 慢性铝暴露罗非鱼血细胞参数和血清生化指标测定 | 第49页 |
3.3.15 慢性铝暴露罗非鱼肝脏氧化应激指标测定 | 第49页 |
3.3.16 慢性铝暴露罗非鱼组织病理观察 | 第49页 |
3.3.17 统计和分析数据 | 第49页 |
3.4 实验结果 | 第49-64页 |
3.4.1 植物乳杆菌CCFM639缓解急性铝暴露小鼠毒性的效果评价 | 第49-54页 |
3.4.2 植物乳杆菌CCFM639缓解慢性铝暴露小鼠毒性的效果评价 | 第54-58页 |
3.4.3 植物乳杆菌CCFM639缓解慢性铝暴露罗非鱼毒性的效果评价 | 第58-64页 |
3.5 本章小结 | 第64-65页 |
第四章 植物乳杆菌CCFM639对肠道菌群及肠道屏障的影响 | 第65-87页 |
4.1 前言 | 第65页 |
4.2 材料与设备 | 第65-66页 |
4.2.1 实验材料与试剂 | 第65-66页 |
4.2.2 实验仪器与设备 | 第66页 |
4.3 实验方法 | 第66-70页 |
4.3.1 口服乳酸菌的培养与制备 | 第66页 |
4.3.2 HT-29 细胞模型实验设计 | 第66-67页 |
4.3.3 HT-29 细胞活性(MTT法)和细胞凋亡检测 | 第67页 |
4.3.4 HT-29 细胞氧化损伤指标和促炎因子水平的检测 | 第67页 |
4.3.5 HT-29 细胞紧密连接蛋白在蛋白水平表达量的检测 | 第67页 |
4.3.6 小鼠模型实验设计 | 第67页 |
4.3.7 小鼠肠道中促炎因子水平的检测 | 第67页 |
4.3.8 小鼠肠道中紧密连接蛋白在基因和蛋白水平表达量的检测 | 第67-68页 |
4.3.9 小鼠肠道通透性的检测 | 第68页 |
4.3.10 体外肠道模型(Batch Culture Fermentation Model)实验设计 | 第68-69页 |
4.3.11 体外肠道模型主要菌群的影响分析 | 第69页 |
4.3.12 体外肠道模型代谢产物内短链脂肪酸水平的检测 | 第69页 |
4.3.13 验证铝暴露对主要菌群代表菌株的影响 | 第69-70页 |
4.3.14 罗非鱼模型实验设计 | 第70页 |
4.3.15 罗非鱼粪便中植物乳杆菌含量的检测 | 第70页 |
4.3.16 罗非鱼肠道内容物中菌群多样性的分析 | 第70页 |
4.3.17 统计和分析数据 | 第70页 |
4.4 结果与讨论 | 第70-85页 |
4.4.1 植物乳杆菌CCFM639对铝暴露HT-29 细胞模型的作用 | 第70-75页 |
4.4.2 植物乳杆菌CCFM639对慢性铝暴露小鼠肠道屏障的作用 | 第75-79页 |
4.4.3 植物乳杆菌CCFM639对铝暴露体外肠道模型菌群的作用 | 第79-82页 |
4.4.4 植物乳杆菌CCFM639对慢性铝暴露罗非鱼肠道菌群的作用 | 第82-84页 |
4.4.5 植物乳杆菌CCFM639对铝暴露肠道微菌群和肠道屏障的作用机制 | 第84-85页 |
4.5 本章小结 | 第85-87页 |
第五章 植物乳杆菌CCFM639对铝诱导神经损伤和行为异常的作用及机制解析 | 第87-103页 |
5.1 前言 | 第87页 |
5.2 材料与设备 | 第87-88页 |
5.2.1 实验材料与试剂 | 第87-88页 |
5.3 实验方法 | 第88-91页 |
5.3.1 口服乳酸菌的培养与制备 | 第88页 |
5.3.2 慢性铝暴露小鼠实验设计 | 第88-89页 |
5.3.3 慢性铝暴露小鼠水迷宫实验 | 第89页 |
5.3.4 慢性铝暴露小鼠开放旷场实验 | 第89页 |
5.3.5 慢性铝暴露小鼠新物体识别实验 | 第89-90页 |
5.3.6 慢性铝暴露小鼠脑中氧化损伤指标和AChE活性的检测 | 第90页 |
5.3.7 慢性铝暴露小鼠脑中微量元素水平的检测 | 第90页 |
5.3.8 慢性铝暴露小鼠脑中促炎因子水平的检测 | 第90页 |
5.3.9 慢性铝暴露小鼠脑中 β 淀粉样蛋白水平的检测 | 第90页 |
5.3.10 慢性铝暴露小鼠脑中紧密连接蛋白在基因和蛋白水平表达量的检测 | 第90-91页 |
5.3.11 统计和分析数据 | 第91页 |
5.4 结果与讨论 | 第91-101页 |
5.4.1 植物乳杆菌CCFM639对慢性铝暴露小鼠神经损伤和行为异常的效果评价 | 第91-94页 |
5.4.2 植物乳杆菌CCFM639对慢性铝暴露小鼠神经损伤和行为异常的初步机制解析 | 第94-101页 |
5.5 本章小结 | 第101-103页 |
论文主要结论与展望 | 第103-106页 |
主要结论 | 第103-104页 |
展望 | 第104-106页 |
论文创新点 | 第106-107页 |
致谢 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-123页 |
附录: 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第123页 |