| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 1 绪论 | 第11-19页 |
| ·白酒发酵微生物 | 第11-12页 |
| ·中国浓香型白酒窖池微生态系统 | 第12-14页 |
| ·酒醅微生物区系 | 第12-13页 |
| ·大曲微生物区系 | 第13页 |
| ·窖泥微生物区系 | 第13-14页 |
| ·微生物多样性的分子生物学研究方法 | 第14-17页 |
| ·T-RFLP技术 | 第15页 |
| ·ARDRA技术 | 第15页 |
| ·PCR-DGGE技术 | 第15-16页 |
| ·PCR-TGGE技术 | 第16页 |
| ·PCR-SSCP技术 | 第16-17页 |
| ·研究意义和内容 | 第17-19页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第17页 |
| ·研究内容 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-32页 |
| ·实验材料 | 第19-22页 |
| ·实验样品 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要实验仪器 | 第19-20页 |
| ·主要溶液配制方法 | 第20-22页 |
| ·实验方法 | 第22-32页 |
| ·酒醅样品总基因组DNA的提取方法 | 第22-23页 |
| ·大曲样品总基因组DNA的提取方法 | 第23-25页 |
| ·窖泥样品总基因组DNA的提取方法 | 第25页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第25页 |
| ·PCR扩增体系和反应条件 | 第25-26页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳操作参数的优化 | 第26-27页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳方法 | 第27-28页 |
| ·银染方法 | 第28-29页 |
| ·数据分析 | 第29-31页 |
| ·SSCP图谱条带的回收、测序与分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-58页 |
| ·酒酷样品总基因组DNA提取方法的优化 | 第32页 |
| ·大曲样品总基因组DNA提取方法的优化 | 第32-33页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳操作参数的优化 | 第33-37页 |
| ·变性缓冲液与样品比例的优化 | 第33-34页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶浓度和交联度的优化 | 第34-36页 |
| ·电泳温度的优化 | 第36-37页 |
| ·银染方法的优化 | 第37-38页 |
| ·酒醅原核微生物群落的分析 | 第38-45页 |
| ·酒醅样品总基因组DNA的提取 | 第38页 |
| ·洒醅样品16S rDNA的PCR扩增 | 第38-39页 |
| ·酒醅原核微生物PCR-SSCP分析 | 第39-44页 |
| ·酒醅原核微生物PCR-SSCP图谱条带的回收、测序与分析 | 第44-45页 |
| ·大曲原核微生物群落的分析 | 第45-51页 |
| ·大曲样品总基因组DNA的提取 | 第45页 |
| ·大曲样品16S rDNA的PCR扩增 | 第45-46页 |
| ·大曲原核微生物PCR-SSCP分析 | 第46-50页 |
| ·大曲原核微生物PCR-SSCP图谱条带的回收、测序与分析 | 第50-51页 |
| ·窖泥原核微生物群落的分析 | 第51-58页 |
| ·窖泥样品总基因组DNA的提取 | 第51-52页 |
| ·窖泥样品16S rDNA的PCR扩增 | 第52页 |
| ·窖泥原核微生物PCR-SSCP分析 | 第52-56页 |
| ·窖泥原核微生物PCR-SSCP图谱条带的回收、测序与分析 | 第56-58页 |
| 4 结论 | 第58-59页 |
| 5 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第64-65页 |
| 附录 | 第65-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
