| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-28页 |
| 1 大豆分离蛋白改性方法 | 第18-23页 |
| ·物理改性 | 第18-19页 |
| ·超声波处理改性 | 第18-19页 |
| ·微波处理改性 | 第19页 |
| ·化学改性 | 第19-21页 |
| ·添加抗氧化剂 | 第20页 |
| ·去酰氨化 | 第20页 |
| ·酸处理 | 第20-21页 |
| ·二硫键部分还原 | 第21页 |
| ·生物工程改性 | 第21页 |
| ·酶法改性 | 第21-23页 |
| 2 蛋白质水解度测定方法 | 第23-25页 |
| ·pH-stat法 | 第23-24页 |
| ·甲醛滴定法 | 第24页 |
| ·TCA沉淀法 | 第24页 |
| ·茚三酮法 | 第24-25页 |
| 3 国内外研究现状 | 第25-26页 |
| 4 研究目的和意义 | 第26页 |
| 5 研究的主要内容 | 第26-28页 |
| 第二章 大豆分离蛋白的酶解研究 | 第28-52页 |
| 1 材料与方法 | 第28-34页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·主要试剂与设备 | 第28-29页 |
| ·药品与试剂 | 第28页 |
| ·设备 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-34页 |
| ·蛋白质含量测定方法 | 第29页 |
| ·蛋白酶活力测定方法 | 第29-30页 |
| ·水解度的测定方法 | 第30页 |
| ·0.5mol/LNaOH标准溶液的配制与标定 | 第30页 |
| ·AS1.398酶解最佳预处理条件试验方法 | 第30页 |
| ·AS1.398酶解最佳条件的确定 | 第30-32页 |
| ·2709酶解最佳预处理条件试验方法 | 第32页 |
| ·2709酶解最佳条件的确定 | 第32-33页 |
| ·双酶复合酶解对酶解的影响试验 | 第33-34页 |
| ·不同酶处理方法水解度比较 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-50页 |
| ·L-酪氨酸标准曲线 | 第34-35页 |
| ·AS1.398中性蛋白酶对酶解的影响结果 | 第35-41页 |
| ·预处理温度对酶解的影响结果 | 第35-36页 |
| ·预处理时间对酶解的影响 | 第36页 |
| ·最佳酶解条件试验结果 | 第36-41页 |
| ·2709碱性蛋白酶对酶解的影响 | 第41-46页 |
| ·预处理条件对酶解的影响 | 第41-42页 |
| ·2709最佳酶解条件的确定 | 第42-46页 |
| ·双酶复合酶解对酶解的影响 | 第46-50页 |
| ·双酶配比对酶解的影响 | 第46-47页 |
| ·pH值对酶解的影响 | 第47页 |
| ·酶解温度对酶解的影响 | 第47-48页 |
| ·酶解时间对酶解的影响 | 第48页 |
| ·双酶复合酶解条件优化研究 | 第48-50页 |
| ·不同酶处理方法对水解度的影响比较 | 第50页 |
| 3 讨论与结论 | 第50-52页 |
| ·AS1.398中性蛋白酶对酶解的影响 | 第50-51页 |
| ·2709碱性蛋白酶对酶解的影响 | 第51页 |
| ·双酶复合酶解对酶解的影响 | 第51-52页 |
| 第三章 酶解产物的SDS-PAGE凝胶电泳分析 | 第52-59页 |
| 1 材料与方法 | 第52-54页 |
| ·材料与设备 | 第52-53页 |
| ·材料 | 第52页 |
| ·主要药品、试剂 | 第52-53页 |
| ·主要仪器与设备 | 第53页 |
| ·试验方法 | 第53-54页 |
| ·缓冲溶液的配制 | 第53页 |
| ·胶的制备 | 第53页 |
| ·样品的处理 | 第53页 |
| ·电泳 | 第53-54页 |
| ·胶片的处理 | 第54页 |
| ·蛋白质分子量的测定 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-57页 |
| ·低分子量标准蛋白质SDS-PAGE电泳标准曲线 | 第54-55页 |
| ·酶解产物SDS-PAGE电泳分析 | 第55-57页 |
| ·AS1.398中性蛋白酶酶解产物分析 | 第55-56页 |
| ·2709碱性蛋白酶酶解产物分析 | 第56页 |
| ·双酶酶解产物分析 | 第56-57页 |
| ·单、双酶酶解产物对比分析 | 第57页 |
| 3 讨论与结论 | 第57-59页 |
| 第四章 大豆分离蛋白酶解产物乳化和起泡特性研究 | 第59-64页 |
| 1 材料与方法 | 第59-60页 |
| ·材料与试剂 | 第59页 |
| ·材料 | 第59页 |
| ·试剂 | 第59页 |
| ·主要仪器 | 第59页 |
| ·试验方法 | 第59-60页 |
| ·起泡性的测定 | 第59-60页 |
| ·乳化性的测定 | 第60页 |
| ·水解度与起泡性的关系 | 第60页 |
| ·水解度与乳化活性的关系 | 第60页 |
| ·最佳酶解条件酶解液的起泡性与乳化性比较 | 第60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-63页 |
| ·水解度对起泡性的影响 | 第60-61页 |
| ·水解度对乳化活性的影响 | 第61-62页 |
| ·最佳酶解条件酶解液的起泡性与乳化性比较 | 第62-63页 |
| 3 讨论与结论 | 第63-64页 |
| 第五章 蛋白胨在微生物培养基中的应用 | 第64-72页 |
| 1 材料与方法 | 第64-66页 |
| ·材料 | 第64-65页 |
| ·供试蛋白胨 | 第64页 |
| ·供试菌种 | 第64页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第64-65页 |
| ·试验方法 | 第65-66页 |
| ·蛋白胨的生产工艺 | 第65页 |
| ·不同干燥方式对蛋白胨外观的影响 | 第65页 |
| ·对微生物生长的影响试验 | 第65页 |
| ·不同水解度制得蛋白胨对微生物生长的影响 | 第65-66页 |
| ·蛋白胨产品指标 | 第66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-71页 |
| ·不同干燥方式所得蛋白胨外观形态特征 | 第66-67页 |
| ·微生物生长曲线的测定 | 第67-69页 |
| ·Bacillus subtilis 1398生长曲线的测定 | 第67页 |
| ·醋酸菌生长曲线的测定 | 第67-68页 |
| ·乳酸菌生长曲线的测定 | 第68页 |
| ·Bacillus subtilis NTG_(14)生长曲线的测定 | 第68-69页 |
| ·不同水解度制得蛋白胨对微生物生长的影响 | 第69-71页 |
| ·产品质量检测结果 | 第71页 |
| 3 讨论与结论 | 第71-72页 |
| 本论文的主要结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 个人简历 | 第81页 |
| 在读研期间发表的论文 | 第81-82页 |
| 在校期间担任社会工作或参与社会实践情况 | 第82页 |