| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 插图和附表清单 | 第8-9页 |
| 1 引言 | 第9-15页 |
| 1.1 燕麦概述 | 第9页 |
| 1.2 燕麦抗氧化多肽的研究 | 第9-10页 |
| 1.3 高血压和ACE抑制肽的研究概述 | 第10-12页 |
| 1.3.1 高血压的概况 | 第10-11页 |
| 1.3.2 高血压的治疗现状 | 第11页 |
| 1.3.3 ACE抑制肽作用机理和结构特点 | 第11-12页 |
| 1.3.4 ACE抑制肽的制备和测定方法 | 第12页 |
| 1.4 燕麦ACE抑制肽的制备和分离纯化 | 第12-15页 |
| 1.4.1 燕麦ACE抑制肽的酶法制备 | 第12-13页 |
| 1.4.2 发酵法制备ACE抑制肽 | 第13页 |
| 1.4.3 燕麦ACE抑制肽的测定 | 第13页 |
| 1.4.4 燕麦ACE抑制肽的分离纯化 | 第13-14页 |
| 1.4.5 研究的目的、内容及意义 | 第14-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-21页 |
| 2.1 试验材料 | 第15页 |
| 2.1.1 试验菌株 | 第15页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第15-16页 |
| 2.3 试验方法 | 第16-20页 |
| 2.3.1 发酵液的制备 | 第16页 |
| 2.3.2 枯草芽孢杆菌生长曲线的测定 | 第16页 |
| 2.3.3 发酵液中燕麦多肽得率的测定 | 第16-17页 |
| 2.3.4 ACE抑制率的测定 | 第17页 |
| 2.3.5 DPPH·自由基清除率的测定 | 第17-18页 |
| 2.3.6 不同因素对液态试验肽得率和ACE抑制率的影响 | 第18页 |
| 2.3.7 不同因素对液态发酵肽得率和DPPH·自由基清除率的影响 | 第18页 |
| 2.3.8 响应面分析法优化试验 | 第18-19页 |
| 2.3.9 凝胶色谱分离燕麦ACE抑制肽 | 第19页 |
| 2.3.10 732强酸型阳离子交换树脂的脱盐处理 | 第19-20页 |
| 2.3.11 半制备RP-HPLC分离ACE抑制肽 | 第20页 |
| 2.4 数据处理 | 第20-21页 |
| 3 结果与分析 | 第21-39页 |
| 3.1 枯草芽孢杆菌生长曲线 | 第21页 |
| 3.2 发酵条件单因素试验 | 第21-26页 |
| 3.2.1 温度对发酵的影响 | 第21-23页 |
| 3.2.2 发酵时间的影响 | 第23-24页 |
| 3.2.3 接种量的影响 | 第24-25页 |
| 3.2.4 初始pH值的影响 | 第25-26页 |
| 3.3 响应面试验分析结果 | 第26-39页 |
| 3.3.1 液态发酵产燕麦ACE抑制肽的响应面分析方案与结果 | 第26-32页 |
| 3.3.2 液态发酵产燕麦抗氧化肽的响应面分析方案与结果 | 第32-37页 |
| 3.3.4 凝胶层析纯化ACE抑制肽 | 第37-38页 |
| 3.3.5 732强酸型阳离子交换柱纯化ACE抑制肽 | 第38页 |
| 3.3.6 半制备RP-HPLC分离ACE抑制肽 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 4.1 微生物发酵法的优势 | 第39页 |
| 4.2 发酵条件的优化 | 第39-40页 |
| 4.3 ACE抑制肽分离纯化方法的选择 | 第40页 |
| 4.4 半制备型RP-HPLC分离纯化的影响因素 | 第40-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 作者简介 | 第46页 |
