| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 羊栖菜概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 羊栖菜简介 | 第11页 |
| 1.1.2 羊栖菜乙酸乙酯部位的化学成分 | 第11-13页 |
| 1.1.2.1 有机酸类 | 第12页 |
| 1.1.2.2 萜类化合物 | 第12页 |
| 1.1.2.3 多酚类 | 第12-13页 |
| 1.1.2.4 甾醇类 | 第13页 |
| 1.1.2.5 多糖 | 第13页 |
| 1.1.3 羊栖菜的药用功效 | 第13-15页 |
| 1.1.3.1 降血糖的作用 | 第14页 |
| 1.1.3.2 抗肿瘤作用 | 第14页 |
| 1.1.3.3 抗氧化作用 | 第14-15页 |
| 1.1.3.4 抗抑郁作用 | 第15页 |
| 1.2 α-葡萄糖苷酶的研究 | 第15-16页 |
| 1.2.1 α-葡萄糖苷酶的简介 | 第15-16页 |
| 1.2.2 α-葡萄糖苷酶抑制剂的研究 | 第16页 |
| 1.3 PTP1B的研究 | 第16-18页 |
| 1.3.1 PTP1B的简介 | 第16页 |
| 1.3.2 PTP1B与糖尿病的关系 | 第16-17页 |
| 1.3.3 PTP1B抑制剂的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 高速逆流色谱法的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4.1 高速逆流色谱法简介 | 第18页 |
| 1.4.2 高速逆流色谱机理 | 第18-19页 |
| 1.4.3 高速逆流色谱在天然活性成分分离中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 分子对接技术 | 第20-21页 |
| 1.6 微生物发酵的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.6.1 微生物发酵在中药中的应用 | 第21页 |
| 1.6.2 微生物发酵在食品中的应用 | 第21-22页 |
| 1.7 本论文的研究意义及主要内容 | 第22-23页 |
| 第二章 羊栖菜乙酸乙酯部位化学成分的研究 | 第23-40页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第23页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.3 实验药品与试剂 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 不同极性部位粗提物的制备 | 第24-25页 |
| 2.3.2 α-葡萄糖苷酶抑制活性的测定 | 第25页 |
| 2.3.3 PTP1B抑制活性的测定 | 第25页 |
| 2.3.4 分配系数(K)的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.5 高速逆流色谱的分离 | 第26页 |
| 2.3.6 高效液相色谱条件的确定及产物的分析 | 第26-27页 |
| 2.3.7 结构鉴定 | 第27页 |
| 2.3.8 分子对接模拟评价 | 第27-28页 |
| 2.3.8.1 受体的前处理过程 | 第27页 |
| 2.3.8.2 配体的前处理过程 | 第27页 |
| 2.3.8.3 分子对接过程 | 第27-28页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第28-39页 |
| 2.4.1 不同极性部位的提取结果 | 第28页 |
| 2.4.2 不同极性部位α-葡萄糖苷酶抑制活性的评价 | 第28页 |
| 2.4.3 不同极性部位PTP1B抑制活性的评价 | 第28-29页 |
| 2.4.4 高效液相色谱分析 | 第29-30页 |
| 2.4.5 优化高速逆流色谱分离条件 | 第30-34页 |
| 2.4.5.1 两相溶剂系统的选择 | 第30-31页 |
| 2.4.5.2 进样量的优化 | 第31-33页 |
| 2.4.5.3 流速的优化 | 第33-34页 |
| 2.4.6 高速逆流色谱分离结果 | 第34页 |
| 2.4.7 目标组分的结构鉴定 | 第34-35页 |
| 2.4.8 DBP对α-葡萄糖苷酶抑制活性的验证 | 第35-36页 |
| 2.4.9 DBP对PTP1B抑制活性实验及分子对接模拟评价 | 第36-39页 |
| 2.4.9.1 DBP对PTP1B抑制活性 | 第36-37页 |
| 2.4.9.2 分子对接模拟解释DBP对PTP1B活性的抑制机理 | 第37-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 羊栖菜发酵产物乙酸乙酯部位的化学成分研究 | 第40-58页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.2.1 实验原料 | 第40页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.3 实验药品与试剂 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 羊栖菜提取液的制备及发酵菌种的筛选 | 第41-43页 |
| 3.3.1.1 羊栖菜提取液的制备 | 第42页 |
| 3.3.1.2 菌种的培养 | 第42页 |
| 3.3.1.3 羊栖菜发酵培养基的制备 | 第42页 |
| 3.3.1.4 孢子菌悬液的制备与发酵 | 第42页 |
| 3.3.1.5 羊栖菜发酵前后乙酸乙酯部位的制备 | 第42-43页 |
| 3.3.1.6 发酵前后乙酸乙酯部位抑制α-葡萄糖苷酶活性的对比 | 第43页 |
| 3.3.2 米曲霉FFCC39液态发酵羊栖菜的单因素实验及响应面中心组合法优化发酵条件 | 第43页 |
| 3.3.3 高速逆流色谱分离发酵产物乙酸乙酯部位的活性成分 | 第43-44页 |
| 3.3.3.1 高效液相色谱分析条件的确定 | 第43-44页 |
| 3.3.3.2 分配系数(K)的测定 | 第44页 |
| 3.3.3.3 高速逆流色谱分离 | 第44页 |
| 3.3.3.4 活性评价 | 第44页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第44-57页 |
| 3.4.1 羊栖菜70%的乙醇部位提取结果 | 第44页 |
| 3.4.2 不同菌株发酵羊栖菜α-葡萄糖苷酶抑制活性的评价 | 第44-45页 |
| 3.4.3 单因素实验结果分析 | 第45-52页 |
| 3.4.3.1 接种量对发酵效果的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.3.2 发酵液pH对发酵效果的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.3.3 培养基碳氮比对发酵效果的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.3.4 中心组合试验设计结果 | 第48-50页 |
| 3.4.3.5 各因素之间交互作用曲面图分析 | 第50-52页 |
| 3.4.3.6 最优条件的验证 | 第52页 |
| 3.4.4 高速逆流色谱分离羊栖菜发酵后的活性成分 | 第52-55页 |
| 3.4.4.1 高效液相色谱分析发酵前后乙酸乙酯部位成分 | 第52-53页 |
| 3.4.4.2 两相溶剂系统的选择 | 第53-54页 |
| 3.4.4.3 高速逆流色谱分离目标组分 | 第54-55页 |
| 3.4.5 α-葡萄糖苷酶抑制活性的验证 | 第55-56页 |
| 3.4.6 产物对PTP1B抑制活性的评价 | 第56-57页 |
| 3.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 附录 | 第65-69页 |
