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提高发酵液pH对乳酸乳球菌有氧呼吸的影响

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
1 文献综述第11-17页
    1.1 乳酸菌概述第11页
    1.2 乳酸菌在工业及生物技术上的应用第11页
    1.3 乳酸乳球菌面临的多种胁迫第11-12页
    1.4 乳酸乳球菌的呼吸作用第12-13页
        1.4.1 呼吸作用第12页
        1.4.2 乳酸乳球菌的呼吸作用第12-13页
    1.5 血红素的测定方法第13页
    1.6 蛋白质组学第13-17页
        1.6.1 蛋白质组学的主要研究策略第14页
        1.6.2 蛋白质组学的技术路线第14-17页
2 引言第17-19页
3 材料与方法第19-32页
    3.1 实验仪器设备与主要试剂第19-20页
        3.1.1 实验所用主要仪器第19页
        3.1.2 实验所用主要试剂第19-20页
    3.2 菌株与培养条件第20-22页
        3.2.1 菌株第20页
        3.2.2 培养基第20页
        3.2.3 血红素溶液的配制第20页
        3.2.4 菌株培养条件第20-22页
    3.3 双向电泳第22-26页
        3.3.1 实验溶剂配制方法第22-23页
        3.3.2 全蛋白样品制备第23-24页
        3.3.3 蛋白浓度测定第24页
        3.3.4 等电聚焦第24-25页
        3.3.5 第二向SDS-PAGE电泳第25-26页
        3.3.6 染色,显色第26页
        3.3.7 PDQuest软件分析第26页
    3.4 质谱鉴定第26-27页
        3.4.1 样品处理(胶内酶解)第26-27页
        3.4.2 肽质量指纹谱第27页
        3.4.3 串联MALDI-TOF-TOF质谱检测第27页
    3.5 反转录实时定量PCR(qRT-PCR)第27-28页
        3.5.1 对照菌乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)总RNA提取第27页
        3.5.2 反转录反应第27-28页
        3.5.3 qRT-PCR验证第28页
    3.6 琥珀酸脱氢酶酶活的测定第28-29页
    3.7 胞内ATP含量的测定第29页
    3.8 过氧化氢酶活性测定第29-30页
    3.9 血红素含量测定第30页
    3.10 酸胁迫第30-31页
    3.11 低温胁迫第31-32页
4 结果第32-50页
    4.1 双向电泳的优化第32-38页
        4.1.1 不同的提取全蛋白样品方法对双向电泳结果的影响第32-33页
        4.1.2 不同pH的胶条对双向电泳结果的影响第33-35页
        4.1.3 不同的SDS-PAGE胶体浓度对双向电泳结果的影响第35-37页
        4.1.4 不同的聚焦条件对双向电泳结果的影响第37-38页
    4.2 重组菌乳酸乳球菌NZ9000(pFL010)在不同溶氧条件下的蛋白质组学研究第38-41页
    4.3 不同培养条件下重组菌乳酸乳球菌NZ9000(pFL010)和对照菌乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)胞内琥珀酸脱氢酶酶活的变化第41-43页
    4.4 提高发酵液pH值促进乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)菌株进行有氧呼吸第43-47页
        4.4.1 不同培养条件下乳酸乳球菌NZ9000(p NZ8148)菌株发酵参数的差异第43-45页
        4.4.2 不同培养条件乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)胞内血红素及ATP含量的变化第45-46页
        4.4.3 2,4-二硝酸苯酚对乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)有氧生长的影响第46-47页
    4.5 不同培养条件下乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)细胞胞内过氧化氢酶酶活的变化第47-48页
    4.6 有氧呼吸有助于提高乳酸乳球菌NZ9000(p NZ8148)对低温胁迫和酸胁迫的抗性第48-50页
5 讨论第50-52页
    5.1 乳酸乳球菌胞内琥珀酸脱氢酶酶活的测定第50页
    5.2 提高发酵液pH促进乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)有氧呼吸40第50-51页
    5.3 有氧呼吸有助于提高乳酸乳球菌NZ9000(p NZ8148)对环境胁迫的抗性第51-52页
6 结论第52-53页
参考文献第53-58页
作者简介第58-59页
致谢第59页

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