| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 0.前言 | 第12-25页 |
| 0.1 虾类加工生产现状 | 第12页 |
| 0.1.1 虾类概述 | 第12页 |
| 0.1.2 虾类加工现状 | 第12页 |
| 0.2 对虾黑变研究进展 | 第12-19页 |
| 0.2.1 对虾的腐败黑变过程 | 第12-13页 |
| 0.2.2 黑变机理 | 第13-14页 |
| 0.2.3 对虾黑变抑制技术 | 第14-19页 |
| 0.3 卵黄抗体研究进展 | 第19-22页 |
| 0.3.1 卵黄免疫球蛋白（IgY）概述 | 第19-20页 |
| 0.3.2 IgY 的应用及其展望 | 第20-22页 |
| 0.4 本文意义 | 第22-23页 |
| 0.5 本论文的思路和技术路线 | 第23-25页 |
| 1 南美白对虾多酚氧化酶的提取与纯化 | 第25-35页 |
| 1.1 引言 | 第25页 |
| 1.2 实验材料 | 第25页 |
| 1.3 实验试剂 | 第25-26页 |
| 1.4 实验仪器 | 第26页 |
| 1.5 实验方法 | 第26-29页 |
| 1.5.1 粗酶的提取 | 第26页 |
| 1.5.2 酶活的测定 | 第26页 |
| 1.5.3 不同 pH 环境对酶活的影响 | 第26页 |
| 1.5.4 丙酮沉淀法纯化粗酶 | 第26-27页 |
| 1.5.5 Sephadex G-100 凝胶层析 | 第27页 |
| 1.5.6 DEAE Sephadex A-50 阴离子交换层析 | 第27页 |
| 1.5.7 蛋白含量测定 | 第27-28页 |
| 1.5.8 SDS-PAGE 纯度检测 | 第28页 |
| 1.5.9 数据分析 | 第28-29页 |
| 1.6 实验结果与分析 | 第29-33页 |
| 1.6.1 不同 pH 环境对粗多酚氧化酶活力的影响 | 第29-30页 |
| 1.6.2 多酚氧化酶的分离纯化 | 第30-32页 |
| 1.6.3 SDS-PAGE 纯度鉴定 | 第32-33页 |
| 1.7 本章小结 | 第33-35页 |
| 2 多酚氧化酶特异性卵黄抗体的制备及性质研究 | 第35-50页 |
| 2.1 引言 | 第35页 |
| 2.2 实验动物 | 第35页 |
| 2.3 实验试剂 | 第35-36页 |
| 2.4 实验仪器 | 第36页 |
| 2.5 溶液体系 | 第36-37页 |
| 2.6 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.6.1 动物免疫 | 第37页 |
| 2.6.2 IgY 的分离提取 | 第37-38页 |
| 2.6.3 蛋白含量测定 | 第38页 |
| 2.6.4 间接酶联免疫吸附法（Ci-ELISA）测定 IgY 效价 | 第38页 |
| 2.6.5 IgY 的免疫应答 | 第38-39页 |
| 2.6.6 IgY 理化性质的研究 | 第39页 |
| 2.6.7 IgY 对多酚氧化酶活性的影响 | 第39页 |
| 2.6.8 数据分析 | 第39-40页 |
| 2.7 实验结果与分析 | 第40-48页 |
| 2.7.1 抗体制备情况 | 第40-41页 |
| 2.7.2 IgY 的理化稳定性 | 第41-43页 |
| 2.7.3 IgY 对多酚氧化酶活性的影响 | 第43-48页 |
| 2.8 本章小结 | 第48-50页 |
| 3 特异性卵黄抗体抑制虾类黑变效果研究 | 第50-60页 |
| 3.1 引言 | 第50页 |
| 3.2 实验试剂 | 第50页 |
| 3.3 实验动物 | 第50页 |
| 3.4 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.4.1 感官评定 | 第51页 |
| 3.4.2 细菌总数测定 | 第51页 |
| 3.4.3 TVB-N 测定 | 第51-52页 |
| 3.4.4 pH 测定 | 第52-53页 |
| 3.5 实验结果与分析 | 第53-58页 |
| 3.5.1 感官鉴定 | 第53-55页 |
| 3.5.2 菌落总数变化情况 | 第55-56页 |
| 3.5.3 TVB-N 变化情况 | 第56-57页 |
| 3.5.4 pH 变化情况 | 第57-58页 |
| 3.6 本章小结 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 4 论文总结 | 第65-67页 |
| 5 论文创新性 | 第67-68页 |
| 6 下一步工作展望 | 第68-69页 |
| 个人简历 | 第69页 |
| 发表的学术论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
