| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 目录 | 第8-14页 |
| 第1章 食品防腐剂的概况及ε-多聚赖氨酸的研究进展 | 第14-27页 |
| 摘要 | 第14页 |
| ·食品防腐剂 | 第14页 |
| ·化学合成防腐剂 | 第14-16页 |
| ·天然防腐剂 | 第16-18页 |
| ·动物源天然防腐剂的种类 | 第16-17页 |
| ·植物源天然防腐剂的种类 | 第17-18页 |
| ·微生物源天然防腐剂的种类 | 第18页 |
| ·天然食品防腐剂存在的问题 | 第18页 |
| ·ε-聚赖氨酸的抗菌活性及应用 | 第18-26页 |
| ·ε-聚赖氨酸概述 | 第19-20页 |
| ·ε-聚赖氨酸的理化性质及其特点 | 第20页 |
| ·ε-聚赖氨酸的合成、生产和纯化 | 第20-21页 |
| ·ε-PL的抗菌活性 | 第21-22页 |
| ·ε-PL在食品中的应用 | 第22-24页 |
| ·ε-PL在医学上的应用 | 第24-25页 |
| ·其他生物学应用 | 第25-26页 |
| ·ε-PL研究的发展趋势 | 第26页 |
| ·展望 | 第26-27页 |
| 第2章 ε-聚赖氨酸拮抗大肠杆菌的活性及抗菌机理研究 | 第27-43页 |
| 摘要 | 第27页 |
| ·前言 | 第27-28页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·试验材料 | 第28页 |
| ·实验仪器设备 | 第28页 |
| ·培养基配制 | 第28页 |
| ·试剂配制 | 第28-29页 |
| ·实验方法 | 第29-34页 |
| ·ε-PL抗菌活性测定方法的建立 | 第29页 |
| ·ε-PL抗菌活性的影响因素 | 第29-30页 |
| ·ε-PL抗菌机理的研究 | 第30-34页 |
| ·实验结果 | 第34-40页 |
| ·不同浓度、温度、pH和处理时间对ε-PL抗菌活性的影响 | 第34-36页 |
| ·ε-PL对E.coli O157：H7形态和结构的影响 | 第36-38页 |
| ·ε-PL对E.coli O157：H7的氧胁迫作用 | 第38-40页 |
| ·ε-PL对E.coli O157：H7基因表达的影响 | 第40页 |
| ·小结与讨论 | 第40-43页 |
| 第3章 ε-聚赖氨酸抑制白色念珠菌的基因差异表达分析 | 第43-66页 |
| 摘要 | 第43页 |
| ·前言 | 第43-44页 |
| ·材料与方法 | 第44-45页 |
| ·试验材料 | 第44页 |
| ·仪器设备及试剂 | 第44页 |
| ·培养基配制 | 第44页 |
| ·试剂配制 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-57页 |
| ·测定ε-Pl对C.albicans抑菌活性 | 第45页 |
| ·ε-PL胁迫下C.albicans抑制消减文库的构建 | 第45-52页 |
| ·RT-qPCR检测ε-PL对C.albicans相关基因转录水平表达的影响 | 第52-53页 |
| ·斑点杂交 | 第53-54页 |
| ·RT-qPCR验证SSH文库筛选基因的差异表达 | 第54-56页 |
| ·Northern印迹杂交 | 第56-57页 |
| ·实验结果 | 第57-63页 |
| ·ε-PL抑制C.albicans的敏感浓度 | 第57-58页 |
| ·C.albicans总RNA的提取 | 第58-59页 |
| ·消减抑制杂交PCR产物分析 | 第59页 |
| ·插入片段检测 | 第59-60页 |
| ·斑点杂交检测 | 第60-61页 |
| ·阳性克隆的生物信息学分析 | 第61页 |
| ·RT-qPCR实验结果分析 | 第61-62页 |
| ·Northern印迹杂交 | 第62-63页 |
| ·小结与讨论 | 第63-66页 |
| 第4章 ε-聚赖氨酸抑制肠炎沙门氏菌的分子机制研究 | 第66-79页 |
| 摘要 | 第66页 |
| ·前言 | 第66-67页 |
| ·材料与方法 | 第67页 |
| ·试验材料 | 第67页 |
| ·仪器设备及试剂 | 第67页 |
| ·培养基配制 | 第67页 |
| ·试剂配制 | 第67页 |
| ·实验方法 | 第67-72页 |
| ·S.enteritidis的phoP和rcsF基因缺失株的构建 | 第67-71页 |
| ·ε-PL对S.enteritidis及其phoP和rcsF基因缺失株生长的影响 | 第71页 |
| ·ε-PL对S.enteritidis phoP和rcsF基因缺失株基因表达的影响 | 第71-72页 |
| ·实验结果 | 第72-77页 |
| ·S.enteritidis phoP和rcsF基因缺失株的构建 | 第73-75页 |
| ·ε-PL对S.enteritidis phoP和rcsF基因缺失株生长的影响 | 第75-76页 |
| ·RT-qPCR检测结果 | 第76-77页 |
| ·小结与讨论 | 第77-79页 |
| 第5章 ε-聚赖氨酸对小鼠肠道菌群构成影响研究 | 第79-92页 |
| 摘要 | 第79页 |
| ·前言 | 第79-80页 |
| ·材料与方法 | 第80-81页 |
| ·试验材料 | 第80页 |
| ·实验仪器设备 | 第80页 |
| ·主要试剂的配制 | 第80-81页 |
| ·实验方法 | 第81-85页 |
| ·动物实验 | 第81页 |
| ·小鼠粪便样品中总基因组DNA的提取 | 第81页 |
| ·小鼠粪便中总基因组DNA的PCR扩增 | 第81-82页 |
| ·DGGE分析 | 第82-83页 |
| ·DGGE凝胶配制 | 第83页 |
| ·DGGE胶染色 | 第83页 |
| ·DGGE条带回收 | 第83页 |
| ·PCR产物的纯化 | 第83-84页 |
| ·目的基因与载体pMD18-T的连接 | 第84页 |
| ·转化 | 第84页 |
| ·菌落PCR验证阳性克隆子 | 第84页 |
| ·测序 | 第84-85页 |
| ·16S rDNA序列分析 | 第85页 |
| ·RT-qPCR检测 | 第85页 |
| ·实验结果 | 第85-91页 |
| ·DGGE分析 | 第85-88页 |
| ·16S rDNA测序分析 | 第88-89页 |
| ·RT-qPCR检测 | 第89-91页 |
| ·讨论 | 第91-92页 |
| 第6章 结论与展望 | 第92-95页 |
| ·结论 | 第92-94页 |
| ·环境因素对ε-PL抗菌活性的影响 | 第92页 |
| ·ε-PL对细菌细胞形态和结构的影响 | 第92页 |
| ·ε-PL的抗菌机理与活性氧有关 | 第92-93页 |
| ·ε-PL对E.coli O157：H7基因表达水平的影响 | 第93页 |
| ·ε-PL激发C.albicans基因的差异表达 | 第93页 |
| ·ε-PL激发S enteritidis中PhoP-PhoQ凋控系统的应答 | 第93-94页 |
| ·ε-PL对小鼠粪便菌群结构和数量的影响 | 第94页 |
| ·建议与展望 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-107页 |
| 附录A1 试剂 | 第107-109页 |
| 附录A2 仪器设备 | 第109-110页 |
| 个人介绍 | 第110页 |
