摘要 | 第1-11页 |
ABSTRACT | 第11-14页 |
缩略语表 | 第14-16页 |
第一章 前言 | 第16-29页 |
1 枸杞及枸杞多糖的研究进展 | 第16-28页 |
·枸杞的研究进展 | 第16-19页 |
·枸杞的化学成分 | 第16-19页 |
·枸杞的药理功能 | 第19页 |
·枸杞多糖的研究进展 | 第19-28页 |
·枸杞多糖的分离与分析 | 第19-20页 |
·枸杞多糖的药理作用 | 第20-28页 |
2 课题构想 | 第28-29页 |
·本科题研究目的意义 | 第28页 |
·研究的主要内容 | 第28-29页 |
第二章 枸杞多糖的提取及组成分析 | 第29-37页 |
0 引言 | 第29页 |
1 材料与方法 | 第29-33页 |
·材料 | 第29页 |
·试剂 | 第29-30页 |
·仪器 | 第30-31页 |
·实验方法 | 第31-33页 |
·枸杞粗多糖的提取 | 第31页 |
·Sevage法脱蛋白 | 第31页 |
·多糖的纯化 | 第31-32页 |
·枸杞多糖纯度的监测 | 第32页 |
·中性糖含量的测定 | 第32页 |
·蛋白质含量的测定 | 第32页 |
·半乳糖醛酸含量测定 | 第32-33页 |
·基本理化性质的测定 | 第33页 |
2 结果与分析 | 第33-35页 |
·枸杞多糖的Sephadex G-75色谱柱洗脱曲线 | 第33-34页 |
·枸杞多糖纯度的监测 | 第34-35页 |
·中性糖含量 | 第35页 |
·蛋白质含量 | 第35页 |
·半乳糖醛酸含量 | 第35页 |
·基本理化性质 | 第35页 |
3 讨论 | 第35-37页 |
第三章 枸杞多糖结构的初步研究 | 第37-52页 |
0 引言 | 第37-38页 |
1 材料与方法 | 第38-42页 |
·材料 | 第38页 |
·试剂 | 第38-39页 |
·仪器 | 第39-40页 |
·实验方法 | 第40-42页 |
·紫外图谱测定 | 第40页 |
·红外图谱测定 | 第40页 |
·枸杞多糖单糖组成成分的测定 | 第40-41页 |
·刚果红实验 | 第41页 |
·β-消去反应 | 第41页 |
·碘-碘化钾反应 | 第41页 |
·枸杞多糖的扫描电镜观察 | 第41-42页 |
2 结果与分析 | 第42-50页 |
·紫外光谱分析 | 第42-46页 |
·枸杞多糖的紫外吸收光谱 | 第42页 |
·不同外界因素对枸杞多糖紫外吸收光谱的影响 | 第42-46页 |
·枸杞多糖的红外光谱 | 第46-47页 |
·枸杞多糖的组成成分分析结果 | 第47页 |
·刚果红实验分析 | 第47-48页 |
·β-消去反应 | 第48-49页 |
·碘-碘化钾反应 | 第49页 |
·枸杞多糖的扫描电镜观察 | 第49-50页 |
3 讨论 | 第50-52页 |
第四章 枸杞子水提物中多糖含量的测定 | 第52-58页 |
0 引言 | 第52页 |
1 材料与方法 | 第52-55页 |
·材料 | 第52页 |
·试剂 | 第52页 |
·仪器 | 第52-53页 |
·实验方法 | 第53-55页 |
·枸杞多糖的提取与精制 | 第53页 |
·标准曲线的绘制 | 第53页 |
·换算因子的测定 | 第53-54页 |
·样品中枸杞多糖的含量测定 | 第54页 |
·重现性试验 | 第54页 |
·稳定性试验 | 第54-55页 |
·回收率测定 | 第55页 |
2 结果与分析 | 第55-57页 |
·标准曲线的绘制 | 第55页 |
·精制枸杞多糖的得率 | 第55页 |
·换算因子 | 第55页 |
·枸杞子水提物的得率 | 第55-56页 |
·灰白色样品粉末的得率 | 第56页 |
·枸杞子水提物中多糖含量的测定 | 第56页 |
·重现性分析 | 第56页 |
·稳定性分析 | 第56页 |
·回收率测定 | 第56-57页 |
3 讨论 | 第57-58页 |
第五章 枸杞多糖对人宫颈癌HeLa细胞凋亡的影响 | 第58-97页 |
0 引言 | 第58-59页 |
1 材料与方法 | 第59-67页 |
·细胞株 | 第59页 |
·试剂 | 第59-60页 |
·仪器 | 第60-61页 |
·实验方法 | 第61-67页 |
·噻唑蓝法检测枸杞多糖对人宫颈癌HeLa细胞生长的抑制作用 | 第61-62页 |
·MTT法检测枸杞多糖对正常细胞L929生长的影响 | 第62页 |
·细胞形态学观察 | 第62-64页 |
·末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记法检测细胞凋亡指数 | 第64页 |
·流式细胞仪检测枸杞多糖对细胞周期的影响 | 第64-65页 |
·激光扫描共聚焦显微镜检测细胞浆钙离子浓度 | 第65-66页 |
·流式细胞仪检测细胞线粒体跨膜电位 | 第66页 |
·细胞培养液中一氧化氮含量的检测 | 第66-67页 |
·细胞培养液中一氧化氮合酶及诱导型一氧化氮合酶活性的检测 | 第67页 |
·细胞膜中唾液酸含量的测定 | 第67页 |
·统计方法 | 第67页 |
2 结果与分析 | 第67-88页 |
·枸杞多糖对人宫颈癌HeLa细胞增殖的影响 | 第67-70页 |
·枸杞多糖对正常细胞L929增殖的影响 | 第70页 |
·形态学观察 | 第70-79页 |
·人宫颈癌HeLa细胞可见光形态学观察结果 | 第70-73页 |
·正常细胞L929可见光形态学观察结果 | 第73-74页 |
·人宫颈癌HeLa细胞荧光显微镜形态学观察结果 | 第74-75页 |
·人宫颈癌HeLa细胞的激光扫描共聚焦显微镜形态学观察结果 | 第75-77页 |
·人宫颈癌HeLa细胞的透射电镜形态学观察结果 | 第77-79页 |
·原位(缺口)末端标记法(TUNEL)检测结果 | 第79-81页 |
·流式细胞仪检测细胞周期的结果 | 第81-82页 |
·激光扫描共聚焦显微镜检测细胞浆钙离子浓度的结果 | 第82-85页 |
·流式细胞仪检测细胞线粒体跨膜电位ΔΨm的结果 | 第85-87页 |
·细胞培养液中一氧化氮含量的检测结果 | 第87页 |
·细胞培养液中一氧化氮合酶及诱导型一氧化氮合酶活性的检测结果 | 第87-88页 |
·细胞膜中唾液酸含量的检测结果 | 第88页 |
3 讨论 | 第88-97页 |
第六章 枸杞多糖对小鼠移植性肝癌的作用 | 第97-114页 |
0 引言 | 第97页 |
1 材料与方法 | 第97-103页 |
·样品 | 第97-98页 |
·试剂 | 第98-99页 |
·仪器 | 第99页 |
·小鼠饲料 | 第99-100页 |
·实验动物 | 第100页 |
·实验方法 | 第100-103页 |
·动物实验分组及给药途径 | 第100页 |
·肝癌动物模型制备及实验方法 | 第100-101页 |
·检测项目 | 第101-103页 |
·数据处理 | 第103页 |
2 结果与分析 | 第103-111页 |
·一般情况 | 第103页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠体重的影响 | 第103-104页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠的抑瘤作用 | 第104-105页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第105页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠NK细胞活性的影响 | 第105-106页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠迟发型超敏反应的影响 | 第106-107页 |
·枸杞多糖对荷瘤小鼠肝组织SOD和MDA的影响 | 第107-108页 |
·肿瘤组织病理学观察 | 第108-111页 |
3 讨论 | 第111-114页 |
第七章 枸杞多糖对高脂血症小鼠血脂的调节作用 | 第114-126页 |
0 引言 | 第114页 |
1 材料与方法 | 第114-117页 |
·样品 | 第114-115页 |
·试剂 | 第115页 |
·仪器 | 第115页 |
·小鼠饲料 | 第115-116页 |
·实验动物 | 第116页 |
·实验方法 | 第116-117页 |
·动物分组 | 第116页 |
·动物饲养及处理方法 | 第116页 |
·检测项目 | 第116-117页 |
·数据处理 | 第117页 |
2 结果与分析 | 第117-123页 |
·一般情况 | 第117-118页 |
·枸杞多糖对小鼠体重的影响 | 第118页 |
·枸杞多糖对小鼠血清总胆固醇的影响 | 第118-119页 |
·枸杞多糖对小鼠血清甘油三酯的影响 | 第119-120页 |
·枸杞多糖对小鼠血清HDL-C、LDL-C及HDL-C/TC的影响 | 第120页 |
·枸杞多糖对小鼠肝组织中TC、TG的影响 | 第120-121页 |
·枸杞多糖对小鼠肝组织中SOD、MDA的影响 | 第121-122页 |
·枸杞多糖对小鼠内脏器官组织指数的影响 | 第122页 |
·枸杞多糖对小鼠血脂水平的影响 | 第122-123页 |
3 讨论 | 第123-126页 |
第八章 结论 | 第126-127页 |
第九章 文献综述:一氧化氮与细胞凋亡 | 第127-138页 |
参考文献 | 第138-157页 |
致谢 | 第157-158页 |
附录一 图表目录(按先后顺序排列) | 第158-160页 |
附录二 攻读学位期间发表论文 | 第160页 |