| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 符号说明 | 第11-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-38页 |
| 1.1 乳酸菌 | 第13-15页 |
| 1.1.1 乳酸菌概述 | 第13页 |
| 1.1.2 乳酸菌的益生特性 | 第13页 |
| 1.1.3 乳酸菌在食品工业中的应用 | 第13-14页 |
| 1.1.4 嗜热链球菌grx02的相关研究 | 第14-15页 |
| 1.2 乳酸菌环境胁迫应激反应机制研究进展 | 第15-21页 |
| 1.2.1 代谢途径的调控 | 第17-19页 |
| 1.2.2 大分子的保护或修复 | 第19-20页 |
| 1.2.3 细胞壁和细胞膜的保护作用 | 第20页 |
| 1.2.4 适应性耐受反应 | 第20-21页 |
| 1.3 我国乳制品中抗生素残留现状及标准 | 第21-22页 |
| 1.3.1 我国乳制品中的抗生素残留现状 | 第21页 |
| 1.3.2 我国乳制品抗生素残留标准及存在问题 | 第21-22页 |
| 1.4 喹诺酮类药物 | 第22-24页 |
| 1.4.1 喹诺酮类药物概述 | 第22-23页 |
| 1.4.2 氧氟沙星 | 第23页 |
| 1.4.3 丙沙星 | 第23页 |
| 1.4.4 喹诺酮类药物对细菌生理特性的影响 | 第23-24页 |
| 1.5 基于系统生物学技术的乳酸菌胁迫应激机制研究 | 第24-26页 |
| 1.5.1 乳酸菌全基因组测序研究进展 | 第24-25页 |
| 1.5.2 蛋白质组学在解析乳酸菌应激反应机制中的应用 | 第25-26页 |
| 1.6 论文主要研究内容 | 第26-29页 |
| 1.6.1 立题依据和研究意义 | 第26-27页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第27-29页 |
| 1.7 参考文献 | 第29-38页 |
| 第2章 低浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02生理特性的影响 | 第38-52页 |
| 2.1 材料与设备 | 第38-39页 |
| 2.1.1 菌种 | 第38-39页 |
| 2.1.2 试剂及材料 | 第39页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第39页 |
| 2.1.4 培养基及主要试剂的配制 | 第39页 |
| 2.2 方法 | 第39-41页 |
| 2.2.1 S.thermophilus grx02的活化培养 | 第39页 |
| 2.2.2 最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第39-40页 |
| 2.2.3 S.thermophilus grx02生长曲线的测定 | 第40页 |
| 2.2.4 菌体形态观察 | 第40页 |
| 2.2.5 细胞膜流动性测定 | 第40页 |
| 2.2.6 胞内酶粗酶液的提取 | 第40页 |
| 2.2.7 β-半乳糖苷酶活力的测定 | 第40-41页 |
| 2.2.8 乳酸脱氢酶活力的测定 | 第41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-46页 |
| 2.3.1 喹诺酮对S.thermophilus grx02的最小抑菌浓度 | 第41页 |
| 2.3.2 不同浓度喹诺酮对S thermophilus grx02生长特性的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.3 不同浓度喹诺酮作用下S.thermophilus grx02的形态变化 | 第42-45页 |
| 2.3.4 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02细胞膜流动性的影响 | 第45页 |
| 2.3.5 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02胞内乳糖代谢关键酶活性的影响 | 第45-46页 |
| 2.4 讨论 | 第46-48页 |
| 2.4.1 喹诺酮对乳酸菌细胞形态的影响 | 第46-47页 |
| 2.4.2 喹诺酮对乳酸菌细胞膜生理特性的影响 | 第47页 |
| 2.4.3 喹诺酮对乳酸菌酶活性的影响 | 第47-48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48页 |
| 2.6 参考文献 | 第48-52页 |
| 第3章 低浓度喹诺酮对S thermophilus grx02发酵性能的影响 | 第52-77页 |
| 3.1 材料与设备 | 第52-53页 |
| 3.1.1 菌种 | 第52-53页 |
| 3.1.2 试剂及材料 | 第53页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第53页 |
| 3.1.4 培养基的配制 | 第53页 |
| 3.2 方法 | 第53-56页 |
| 3.2.1 S.thermophilus grx02的活化培养 | 第53页 |
| 3.2.2 发酵乳样品的制备 | 第53-54页 |
| 3.2.3 凝乳时间的测定 | 第54页 |
| 3.2.4 pH值和滴定酸度的测定 | 第54页 |
| 3.2.5 脱水收缩性的测定 | 第54页 |
| 3.2.6 发酵乳质构特性的测定 | 第54页 |
| 3.2.7 发酵乳流变特性的测定 | 第54-55页 |
| 3.2.8 蛋白水解能力的测定 | 第55页 |
| 3.2.9 发酵乳的感官评定 | 第55页 |
| 3.2.10 发酵乳样品中活菌数的测定 | 第55页 |
| 3.2.11 发酵乳中风味成分检测 | 第55-56页 |
| 3.2.12 化合物定性定量方法 | 第56页 |
| 3.3 结果与分析 | 第56-72页 |
| 3.3.1 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02产酸能力的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.2 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02凝乳时间的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.3 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02产黏能力的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.4 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02发酵乳脱水收缩性的影响 | 第59页 |
| 3.3.5 不同浓度喹诺酮对S thermophilus grx02发酵乳质构的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.6 不同浓度喹诺酮对S. thermophilus grx02发酵乳流变特性的影响 | 第60-66页 |
| 3.3.7 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02蛋白水解能力的影响 | 第66-67页 |
| 3.3.8 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02发酵乳感官质量的影响 | 第67-68页 |
| 3.3.9 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02菌活力的影响 | 第68页 |
| 3.3.10 不同浓度喹诺酮对S.thermophilus grx02发酵乳挥发性风味物质的影响 | 第68-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-73页 |
| 3.4.1 低浓度喹诺酮对发酵乳稳定性的影响 | 第72页 |
| 3.4.2 低浓度喹诺酮对发酵乳流变特性的影响 | 第72页 |
| 3.4.3 低浓度喹诺酮对发酵乳风味的影响 | 第72-73页 |
| 3.5 本章小结 | 第73-74页 |
| 3.6 参考文献 | 第74-77页 |
| 第4章 低浓度氧氟沙星对S.thermophilus grx02蛋白质组表达的影响 | 第77-96页 |
| 4.1 材料与设备 | 第77-78页 |
| 4.1.1 主要仪器设备 | 第77-78页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第78页 |
| 4.1.3 培养基及主要试剂的配制 | 第78页 |
| 4.2 方法 | 第78-81页 |
| 4.2.1 菌种培养 | 第78页 |
| 4.2.2 样品制备 | 第78页 |
| 4.2.3 蛋白质浓度的测定 | 第78-79页 |
| 4.2.4 蛋白质样品的纯化 | 第79页 |
| 4.2.5 双向凝胶电泳 | 第79-80页 |
| 4.2.6 考马斯亮蓝染色 | 第80页 |
| 4.2.7 凝胶图像扫描与分析 | 第80页 |
| 4.2.8 MALD-TOF-MS质谱鉴定 | 第80页 |
| 4.2.9 肽质量指纹谱 | 第80-81页 |
| 4.3 结果与分析 | 第81-88页 |
| 4.3.1 样品蛋白质含量测定结果 | 第81页 |
| 4.3.2 嗜热链球菌细胞全蛋白2-DE图谱 | 第81-82页 |
| 4.3.3 低浓度喹诺酮作用下的S.thermophilus grx02蛋白表达分析 | 第82-84页 |
| 4.3.4 差异蛋白的质谱鉴定 | 第84-88页 |
| 4.4 讨论 | 第88-91页 |
| 4.4.1 氧氟沙星对通用应激蛋白表达的影响 | 第88-89页 |
| 4.4.2 氧氟沙星对S thermophilus grx02糖代谢相关蛋白表达的影响 | 第89-90页 |
| 4.4.3 氧氟沙星对核苷酸代谢相关蛋白质表达的影响 | 第90页 |
| 4.4.4 氧氟沙星对翻译和转录相关蛋白表达的影响 | 第90-91页 |
| 4.5 本章小结 | 第91-92页 |
| 4.6 参考文献 | 第92-96页 |
| 第5章 结论与展望 | 第96-98页 |
| 5.1 结论 | 第96-97页 |
| 5.2 本论文的主要创新点 | 第97页 |
| 5.3 展望 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第99-101页 |
