| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 研究背景、目的及意义 | 第10-11页 |
| 1.2 赭曲霉毒素A、伏马菌素B_1及其检测方法概述 | 第11-13页 |
| 1.2.1 赭曲霉毒素A(OTA) | 第11-12页 |
| 1.2.1.1 OTA理化性质 | 第11页 |
| 1.2.1.2 OTA毒理性质及其致毒机理 | 第11-12页 |
| 1.2.2 伏马菌素B_1(FB_1) | 第12-13页 |
| 1.2.2.1 FB_1理化性质 | 第12页 |
| 1.2.2.2 FB_1毒理性质及其作用机理 | 第12-13页 |
| 1.2.3 赭曲霉毒素A和伏马菌素Bi的检测方法 | 第13页 |
| 1.3 核酸适配子(aptamer)技术 | 第13-15页 |
| 1.3.1 核酸适配子简介 | 第13-14页 |
| 1.3.2 核酸适配子筛选-SELEX技术 | 第14页 |
| 1.3.3 核酸适配子优点 | 第14-15页 |
| 1.4 非标记光学生物传感技术 | 第15-17页 |
| 1.4.1 表面等离子体共振技术(SPR) | 第15-16页 |
| 1.4.2 光波导光模光谱技术(OWLS) | 第16页 |
| 1.4.3 光反射干涉技术(RIFS) | 第16-17页 |
| 1.5 纳米多孔硅概述 | 第17-19页 |
| 1.5.1 纳米多孔材料 | 第17页 |
| 1.5.2 纳米多孔硅 | 第17页 |
| 1.5.3 多孔硅Fabry-Perot干涉层 | 第17-18页 |
| 1.5.4 纳米多孔硅的应用 | 第18-19页 |
| 1.6 研究内容 | 第19-20页 |
| 第2章 TiO_2修饰多孔硅Fabry-Perot层的制备、表面化学修饰及其表征 | 第20-33页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验部分 | 第20-32页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第20-21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.2.3 实验试剂配制 | 第22-23页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第23-27页 |
| 2.2.4.1 多孔硅的刻蚀 | 第23-25页 |
| 2.2.4.2 TiO_2-多孔硅复合层的制作 | 第25页 |
| 2.2.4.3 多孔硅与TiO_2-多孔硅的表征 | 第25页 |
| 2.2.4.4 反射干涉光谱的收集 | 第25页 |
| 2.2.4.5 TiO_2-多孔硅表面化学修饰及其表征 | 第25-27页 |
| 2.2.5 实验结果和讨论 | 第27-32页 |
| 2.2.5.1 刻蚀电流密度的选择 | 第27-28页 |
| 2.2.5.2 TiO_2-多孔硅复合层及其光谱图 | 第28-29页 |
| 2.2.5.3 多孔硅及Ti02纳米层SEM表征 | 第29-30页 |
| 2.2.5.4 TiO_2纳米层表面化学修饰 | 第30-31页 |
| 2.2.5.5 醛基修饰传感芯片适配子的偶联 | 第31-32页 |
| 2.3 小结 | 第32-33页 |
| 第3章 农产品中真菌毒素OTA和FB_1的非标记光学检测 | 第33-51页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验部分 | 第33-50页 |
| 3.2.1 试剂和材料 | 第33-35页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第35页 |
| 3.2.3 实验试剂配制 | 第35-36页 |
| 3.2.3.1 ELISA溶液配制 | 第35-36页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.2.4.1 实验体系条件的优化 | 第36页 |
| 3.2.4.2 农产品中OTA的非标记检测 | 第36-37页 |
| 3.2.4.3 农产品中FB_1的非标记检测 | 第37-38页 |
| 3.2.4.4 谷物样本加标回收率测定 | 第38页 |
| 3.2.4.5 间接竞争ELISA实验 | 第38-39页 |
| 3.2.5 实验结果和讨论 | 第39-50页 |
| 3.2.5.1 核酸适配子-多孔硅芯片传感原理 | 第39-40页 |
| 3.2.5.2 APTES与TiO_2纳米层反应时间的优化 | 第40-41页 |
| 3.2.5.3 戊二醛与APTES反应时间的优化 | 第41页 |
| 3.2.5.4 OTA-aptamer互补链偶联条件的优化 | 第41-42页 |
| 3.2.5.5 OTA-aptamer杂交浓度的优化 | 第42页 |
| 3.2.5.6 OTA与其aptamer结合时间优化 | 第42-43页 |
| 3.2.5.7 OTA标准曲线 | 第43-44页 |
| 3.2.5.8 OTA-aptamer特异性分析 | 第44-45页 |
| 3.2.5.9 FB_1-aptamer互补链固定条件的优化 | 第45页 |
| 3.2.5.10 FB_1-aptamer杂交浓度的优化 | 第45-46页 |
| 3.2.5.11 FB_1与其aptamer结合时间优化 | 第46-47页 |
| 3.2.5.12 FB_1标准曲线 | 第47-48页 |
| 3.2.5.13 FB_1-aptamer特异性分析 | 第48-49页 |
| 3.2.5.14 加标回收率测定 | 第49-50页 |
| 3.3 小结 | 第50-51页 |
| 第4章 核酸适配子-多孔硅阵列同时检测农产品中的OTA和FB_1 | 第51-62页 |
| 4.1 引言 | 第51页 |
| 4.2 实验部分 | 第51-61页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第51-52页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第52-53页 |
| 4.2.3 实验试剂配制 | 第53页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.2.4.1 核酸适配子-多孔硅阵列芯片的制备 | 第53-55页 |
| 4.2.4.2 多重标准曲线的建立及最低检出限 | 第55页 |
| 4.2.4.3 加标样品多重回收率测 | 第55页 |
| 4.2.5 实验结果与论 | 第55-61页 |
| 4.2.5.1 多孔硅阵列同时检测原理 | 第55-56页 |
| 4.2.5.2 多孔硅阵列芯片光谱 | 第56-57页 |
| 4.2.5.3 多重标准曲线及最低检出限 | 第57-60页 |
| 4.2.5.4 加标回收率计算 | 第60-61页 |
| 4.3 小结 | 第61-62页 |
| 第5章 总结与展望 | 第62-64页 |
| 5.1 总结 | 第62-63页 |
| 5.2 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
